| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 前言 | 第8-25页 |
| 1.1 NO作为信号分子的发现历程 | 第8页 |
| 1.2 植物体内NO的合成 | 第8-9页 |
| 1.3 NO的生物学功能 | 第9-10页 |
| 1.4 蛋白质亚硝基化概述 | 第10-14页 |
| 1.4.1 蛋白质亚硝基化的基本原理 | 第10-11页 |
| 1.4.2 蛋白质亚硝基化修饰的生物学意义 | 第11-12页 |
| 1.4.3 蛋白质巯基亚硝基化检测方法 | 第12-14页 |
| 1.5 GSNOR研究进展 | 第14-23页 |
| 1.5.1 GSNO是NO的存储库 | 第14-16页 |
| 1.5.2 GSNOR的蛋白质空间结构 | 第16-17页 |
| 1.5.3 拟南芥GSNOR的组织及亚细胞定位 | 第17-18页 |
| 1.5.4 GSNOR功能缺失突变体的表型 | 第18-20页 |
| 1.5.5 GSNOR调控植物的生长发育 | 第20-21页 |
| 1.5.6 GSNOR在植物抗胁迫反应中的作用 | 第21-22页 |
| 1.5.7 GSNOR在动物体内的作用 | 第22-23页 |
| 1.5.8 GSNOR抑制剂 | 第23页 |
| 1.6 研究目的及科学意义 | 第23-25页 |
| 第二章 试验材料和方法 | 第25-41页 |
| 2.1 试验材料 | 第25-31页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第25页 |
| 2.1.3 试验所需仪器设备 | 第25-26页 |
| 2.1.4 试验所需软件及数据库资源 | 第26页 |
| 2.1.5 试验所需试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.6 试验所需溶液的配制 | 第27-31页 |
| 2.2 试验方案 | 第31-41页 |
| 2.2.1 DH5α 感受态细胞制备的注意事项 | 第31页 |
| 2.2.2 GV3101感受态细胞制备方法 | 第31-32页 |
| 2.2.3 Gateway技术原理示意图 | 第32页 |
| 2.2.4 目的片段的克隆 | 第32-34页 |
| 2.2.5 BP反应及转化DH5α 感受态细胞 | 第34-36页 |
| 2.2.6 LR反应及转化DH5α 感受态细胞 | 第36-37页 |
| 2.2.7 农杆菌介导的浸花转化法从而获得转基因材料 | 第37页 |
| 2.2.8 拟南芥的种植方法 | 第37-38页 |
| 2.2.9 拟南芥转基因植株的筛选鉴定 | 第38页 |
| 2.2.10 快速提取拟南芥基因组DNA的方法 | 第38页 |
| 2.2.11 转基因材料的背景鉴定及基因型鉴定 | 第38-39页 |
| 2.2.12 拟南芥总蛋白简易提取法 | 第39-40页 |
| 2.2.13 样品蛋白的定性定量检测 | 第40-41页 |
| 第三章 试验结果与分析 | 第41-57页 |
| 3.1 目的基因PCR产物检测结果 | 第41-42页 |
| 3.2 点突变克隆序列比对结果 | 第42-44页 |
| 3.3 转基因植株的筛选结果 | 第44-48页 |
| 3.3.1 GSNORC271W回补系叶片DNA鉴定 | 第45-47页 |
| 3.3.2 Western blot检测T2代GSNORC271W的结果 | 第47-48页 |
| 3.4 转基因材料表型分析 | 第48-57页 |
| 3.4.1 表皮毛分叉数统计分析 | 第48-49页 |
| 3.4.2 第三级分枝数统计分析 | 第49-51页 |
| 3.4.3 侧根数统计分析 | 第51-53页 |
| 3.4.4 花器官比较 | 第53-55页 |
| 3.4.5 比较花发育上的缺陷 | 第55-56页 |
| 3.4.6 比较果荚发育上的缺陷 | 第56-57页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第57-61页 |
| 4.1 定点突变材料表型差异探讨 | 第58页 |
| 4.2 点突变蛋白分子结构的差异 | 第58-59页 |
| 4.3 展望 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 附录 | 第69-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
