| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-8页 |
| 1 吲哚的微生物好氧转化研究进展 | 第8-21页 |
| 1.1 吲哚的来源、性质及危害 | 第8-10页 |
| 1.1.1 吲哚的性质及应用 | 第8-9页 |
| 1.1.2 吲哚的人为来源及危害 | 第9-10页 |
| 1.2 吲哚好氧微生物降解的研究概述 | 第10-14页 |
| 1.2.1 吲哚好氧降解微生物资源 | 第10-12页 |
| 1.2.2 吲哚好氧微生物降解途径 | 第12-14页 |
| 1.2.3 吲哚好氧微生物降解机制 | 第14页 |
| 1.3 微生物转化吲哚合成靛蓝的研究概述 | 第14-19页 |
| 1.3.1 靛蓝合成的微生物资源 | 第14-16页 |
| 1.3.2 靛蓝合成的酶资源 | 第16-17页 |
| 1.3.3 靛蓝微生物合成途径 | 第17-19页 |
| 1.4 本论文研究内容及意义 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究背景 | 第19页 |
| 1.4.2 研究内容及意义 | 第19-21页 |
| 2 吲哚降解菌的分离鉴定及其特性研究 | 第21-40页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第21-28页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第24-28页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第28-39页 |
| 2.2.1 吲哚降解菌的分离筛选和鉴定 | 第28-30页 |
| 2.2.2 菌株IDO3的抗生素耐受性 | 第30-31页 |
| 2.2.3 菌株IDO3的底物广谱性 | 第31页 |
| 2.2.4 菌株IDO3的生长-吲哚降解曲线 | 第31-32页 |
| 2.2.5 不同环境因素对菌株IDO3降解吲哚的影响 | 第32-36页 |
| 2.2.6 菌株IDO3降解吲哚的产物分离与鉴定，降解途径推测 | 第36-39页 |
| 2.3 本章小结 | 第39-40页 |
| 3 菌株IDO3克隆文库的构建以及吲哚加氧酶基因的获取 | 第40-61页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-49页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第41-49页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第49-59页 |
| 3.2.1 Burkholderia sp. IDO3基因组DNA的提取 | 第49页 |
| 3.2.2 随机切断菌株IDO3基因组 | 第49-50页 |
| 3.2.3 克隆文库的构建及吲哚加氧酶的筛选 | 第50-51页 |
| 3.2.4 克隆文库插入序列分析及吲哚加氧酶的比对 | 第51-55页 |
| 3.2.5 RT-qPCR实验验证吲哚加氧酶参与吲哚降解过程 | 第55-57页 |
| 3.2.6 基因敲除实验验证吲哚加氧酶参与吲哚降解过程 | 第57-59页 |
| 3.3 本章小结 | 第59-61页 |
| 4 吲哚加氧酶的克隆表达及其应用于靛蓝合成 | 第61-78页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第61-67页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第61-63页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第63-67页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第67-76页 |
| 4.2.1 吲哚加氧酶的克隆和重组大肠杆菌的构建 | 第67-68页 |
| 4.2.2 吲哚加氧酶的活性验证 | 第68-69页 |
| 4.2.3 重组大肠杆菌IND_AB合成蓝色物质的分析鉴定 | 第69-71页 |
| 4.2.4 重组大肠杆菌IND_AB合成靛蓝的条件优化 | 第71-75页 |
| 4.2.5 重组大肠杆菌IND_AB合成靛蓝曲线 | 第75-76页 |
| 4.3 本章小结 | 第76-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-85页 |
| 附录A Burkholderia sp. IDO3的 16S rRNA序列 | 第85-86页 |
| 附录B 源于Burkholderia sp. IDO3的克隆文库序列 | 第86-88页 |
| 附录C Burkholderia sp. IDO3吲哚加氧酶IndA序列 | 第88-89页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-92页 |
