| 摘要 | 第9-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 缩略语 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-31页 |
| 1 植物的Cd毒害 | 第16-20页 |
| 1.1 影响生长发育和光合作用 | 第16-17页 |
| 1.2 影响水分代谢和矿质元素吸收 | 第17-18页 |
| 1.3 影响活性氧代谢和抗氧化系统 | 第18-19页 |
| 1.4 影响植物的细胞结构 | 第19-20页 |
| 2 水杨酸提高植物Cd抗性的作用 | 第20-23页 |
| 2.1 SA对植物生长的影响 | 第20-21页 |
| 2.2 SA对植物Cd毒害的缓解 | 第21-22页 |
| 2.3 SA提高植物Cd抗性的机理 | 第22-23页 |
| 3 植物Cd抗性的蛋白质机制 | 第23-25页 |
| 3.1 植物络合蛋白 | 第23-24页 |
| 3.2 Cd转运蛋白 | 第24页 |
| 3.3 蛋白质组响应 | 第24-25页 |
| 4 植物对Cd的富集和植物修复 | 第25-28页 |
| 4.1 植物对Cd的吸收、转运和积累 | 第25-26页 |
| 4.2 Cd的超积累植物 | 第26-27页 |
| 4.3 Cd污染的植物修复 | 第27-28页 |
| 5 鸢尾属植物对Cd等重金属的积累和抗性研究 | 第28-29页 |
| 6 本论文研究的主要内容和拟解决的问题 | 第29-31页 |
| 第二章 路易斯安娜鸢尾对重金属Cd的吸收、累积和生理抗性 | 第31-43页 |
| 1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 1.1 植物材料 | 第32页 |
| 1.2 处理方法 | 第32页 |
| 1.3 主要生理指标测定方法 | 第32-34页 |
| 1.4 资料分析 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-40页 |
| 2.1 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾生长的影响 | 第34-35页 |
| 2.2 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾Cd含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.3 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾叶绿素含量的影响 | 第36-37页 |
| 2.4 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾光合参数的影响 | 第37页 |
| 2.5 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾CAT、POD、SOD活性和MDA含量的影响 | 第37-38页 |
| 2.6 不同浓度Cd对路易斯安娜鸢尾细胞结构的影响 | 第38-40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 第三章 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾生长发育和光合作用的影响 | 第43-58页 |
| 第一节 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾生长发育的影响 | 第43-50页 |
| 1 材料与方法 | 第44-45页 |
| 1.1 植物材料 | 第44页 |
| 1.2 处理方法 | 第44页 |
| 1.3 主要测定指标 | 第44-45页 |
| 1.4 数据分析 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-49页 |
| 2.1 SA对Cd胁迫下根、叶生长形态的影响 | 第45页 |
| 2.2 SA对Cd胁迫下根、叶干重的影响 | 第45-46页 |
| 2.3 SA对Cd胁迫下根、叶含水量的影响 | 第46-48页 |
| 2.4 SA对Cd胁迫下根系活力的影响 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-50页 |
| 第二节 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾光合作用的影响 | 第50-58页 |
| 1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 1.1 植物材料 | 第51页 |
| 1.2 处理方法 | 第51页 |
| 1.3 主要测定指标 | 第51-52页 |
| 1.4 数据分析 | 第52页 |
| 2 结果与分析 | 第52-55页 |
| 2.1 SA对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾叶绿素含量的影响 | 第52页 |
| 2.2 SA对不同Cd浓度胁迫下光合参数的的影响 | 第52-53页 |
| 2.3 SA预处理对100 μM Cd胁迫下不同处理天数的光合和蒸腾速率变化 | 第53-55页 |
| 3 讨论 | 第55-58页 |
| 第四章 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾矿质元素吸收的影响 | 第58-69页 |
| 1 材料与方法 | 第59-61页 |
| 1.1 植物材料 | 第59页 |
| 1.2 处理方法 | 第59页 |
| 1.3 主要测定指标 | 第59-60页 |
| 1.4 数据分析 | 第60-61页 |
| 2 结果与分析 | 第61-66页 |
| 2.1 SA对Cd含量的影响 | 第61页 |
| 2.2 SA对Cd胁迫下N含量的影响 | 第61-62页 |
| 2.3 SA对叶片Cd、P、K、S相对含量的影响 | 第62-63页 |
| 2.4 SA对基部茎节Cd、P、K、S相对含量的影响 | 第63-65页 |
| 2.5 SA对根表皮Cd、P、K、S相对含量的影响 | 第65页 |
| 2.6 SA对根皮层Cd、P、K、S相对含量的影响 | 第65页 |
| 2.7 SA对根维管柱Cd、P、K、S相对含量的影响 | 第65-66页 |
| 3 讨论 | 第66-69页 |
| 第五章 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾抗氧化酶活性和细胞超微结构的影响 | 第69-85页 |
| 第一节 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾抗氧化系统的影响 | 第69-77页 |
| 1 材料与方法 | 第70-72页 |
| 1.1 植物材料 | 第70页 |
| 1.2 处理方法 | 第70页 |
| 1.3 主要测定指标 | 第70-71页 |
| 1.4 数据分析 | 第71-72页 |
| 2 结果与分析 | 第72-76页 |
| 2.1 SA对Cd胁迫下CAT活性的影响 | 第72页 |
| 2.2 SA对Cd胁迫下POD活性的影响 | 第72-73页 |
| 2.3 SA对Cd胁迫下APX活性的影响 | 第73-74页 |
| 2.4 SA对Cd胁迫下SOD活性的影响 | 第74页 |
| 2.5 SA对Cd胁迫下MDA含量的影响 | 第74-75页 |
| 2.6 SA对Cd胁迫下Pro含量的影响 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-77页 |
| 第二节 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾叶绿体和根尖细胞超微结构的影响 | 第77-85页 |
| 1 材料与方法 | 第78页 |
| 1.1 植物材料 | 第78页 |
| 1.2 处理方法 | 第78页 |
| 1.3 切片制作方法 | 第78页 |
| 2 结果与分析 | 第78-82页 |
| 2.1 叶绿体超微结构的变化 | 第78-82页 |
| 2.2 根尖细胞超微结构的变化 | 第82页 |
| 3 讨论 | 第82-85页 |
| 第六章 外源水杨酸对Cd胁迫下路易斯安娜鸢尾蛋白质组表达的影响 | 第85-103页 |
| 1 材料与方法 | 第86-89页 |
| 1.1 植物材料培养与处理 | 第86页 |
| 1.2 蛋白提取 | 第86-87页 |
| 1.3 双向电泳 | 第87页 |
| 1.4 染色 | 第87-88页 |
| 1.5 图像获得与分析 | 第88页 |
| 1.6 胶内酶解 | 第88-89页 |
| 1.7 质谱鉴定与数据检索 | 第89页 |
| 2 结果与分析 | 第89-100页 |
| 2.1 路易斯安娜鸢尾叶片总蛋白双向电泳分析 | 第89-91页 |
| 2.2 SA预处理与单独Cd处理路易斯安娜鸢尾叶片总蛋白双向电泳分析 | 第91-94页 |
| 2.3 路易斯安娜鸢尾叶片差异蛋白的质谱鉴定 | 第94-100页 |
| 3 讨论 | 第100-103页 |
| 全文总结与创新点 | 第103-105页 |
| 参考文献 | 第105-125页 |
| 攻读博士学位期间发表(待发表)的研究论文 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
