| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 GDF11对2型糖尿病小鼠糖脂代谢及胰岛β细胞功能的影响 | 第12-40页 |
| 1.1 前言 | 第12-13页 |
| 1.2 实验器材及试剂 | 第13-17页 |
| 1.2.1 实验主要仪器 | 第13-15页 |
| 1.2.2 实验试剂 | 第15-16页 |
| 1.2.3 溶液配制 | 第16-17页 |
| 1.3 实验方法 | 第17-25页 |
| 1.3.1 实验动物饲养及模型建立 | 第17-19页 |
| 1.3.2 各组小鼠代谢水平测定 | 第19-20页 |
| 1.3.3 ELISA法测定血清胰岛素、胰高血糖素及HbA1c水平 | 第20-21页 |
| 1.3.4 检测血清TC、TG及FFA等水平 | 第21-22页 |
| 1.3.5 分离胰岛 | 第22-23页 |
| 1.3.6 Real-time PCR检测胰岛β细胞关键转录因子mRNA表达水平 | 第23-25页 |
| 1.4 统计分析 | 第25页 |
| 1.5 结果 | 第25-34页 |
| 1.5.1 GDF11预处理呈剂量依赖性方式改善HFD/STZ小鼠β细胞功能 | 第26页 |
| 1.5.2 GDF11改善糖尿病小鼠糖脂代谢 | 第26-29页 |
| 1.5.3 GDF11改善糖尿病小鼠糖耐量及胰岛素分泌功能 | 第29-31页 |
| 1.5.4 GDF11上调糖尿病小鼠胰岛的β细胞功能重要基因表达 | 第31-34页 |
| 1.6 讨论 | 第34-36页 |
| 1.7 结论 | 第36页 |
| 参考文献 | 第36-40页 |
| 第二章 GDF11对2型糖尿病小鼠胰岛形态及β细胞含量的影响 | 第40-57页 |
| 2.1 前言 | 第40-41页 |
| 2.2 实验器材及试剂 | 第41-43页 |
| 2.2.1 实验主要仪器 | 第41页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第41-43页 |
| 2.3 实验方法 | 第43-45页 |
| 2.3.1 实验动物饲养及模型建立 | 第43页 |
| 2.3.2 胰腺组织取材 | 第43页 |
| 2.3.3 HE染色 | 第43-44页 |
| 2.3.4 免疫荧光染色 | 第44-45页 |
| 2.3.5 ELISA检测胰岛内胰岛素及胰高血糖素含量 | 第45页 |
| 2.4 统计分析 | 第45-46页 |
| 2.5 结果 | 第46-52页 |
| 2.5.1 GDF11预处理呈剂量依赖性方式改善HFD/STZ小鼠胰岛形态及β细胞含量 | 第46页 |
| 2.5.2 GDF11改善糖尿病小鼠胰岛形态 | 第46-47页 |
| 2.5.3 GDF11改善糖尿病小鼠胰岛β/α细胞含量及分布 | 第47页 |
| 2.5.4 GDF11减少糖尿病小鼠胰岛β细胞凋亡 | 第47-51页 |
| 2.5.5 GDF11提高糖尿病小鼠胰腺内胰岛素含量 | 第51-52页 |
| 2.6 讨论 | 第52-54页 |
| 2.7 结论 | 第54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 第三章 GDF11对2型糖尿病小鼠胰岛β细胞作用的机制 | 第57-71页 |
| 3.1 前言 | 第57页 |
| 3.2. 实验器材及试剂 | 第57-61页 |
| 3.2.1 实验主要仪器 | 第57-58页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第58-60页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第60-61页 |
| 3.3 实验方法 | 第61-63页 |
| 3.3.1 实验动物饲养及模型建立 | 第61页 |
| 3.3.2 分离胰岛 | 第61页 |
| 3.3.3 Western blot检测胰岛相关蛋白的表达 | 第61-63页 |
| 3.4 统计分析 | 第63页 |
| 3.5 结果 | 第63-66页 |
| 3.5.1 GDF11可激活胰岛TGF-β/Smad2信号通路 | 第63-65页 |
| 3.5.2 GDF11可激活胰岛PI3K-AKT-FoXO1信号通路 | 第65-66页 |
| 3.6 讨论 | 第66-68页 |
| 3.7 结论 | 第68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 全文结论 | 第71-72页 |
| 综述 | 第72-87页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 攻读学位期间成果 | 第87-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
