| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第7-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-43页 |
| 1.1 果胶概述 | 第13-22页 |
| 1.1.1 果胶的结构 | 第13-17页 |
| 1.1.2 果胶结构的研究方法 | 第17-21页 |
| 1.1.3 果胶的活性 | 第21-22页 |
| 1.2 果胶结构的修饰 | 第22-24页 |
| 1.2.1 果胶结构的修饰方法 | 第22页 |
| 1.2.2 酸碱修饰的柠檬果胶 | 第22-23页 |
| 1.2.3 果胶结构修饰的意义 | 第23-24页 |
| 1.3 半乳凝素-3（galectin-3）及其抑制剂的概述 | 第24-27页 |
| 1.3.1 galectin-3 概述 | 第24-26页 |
| 1.3.2 galectin-3 对肿瘤的促进作用 | 第26-27页 |
| 1.4 galectin-3 与果胶相互作用的研究现状 | 第27-29页 |
| 1.5 选题依据、目的和意义 | 第29-31页 |
| 参考文献 | 第31-43页 |
| 第二章 建立并且比较五种检测果胶类多/寡糖与galectin-3 相互作用的方法 | 第43-73页 |
| 2.1 材料，试剂与仪器 | 第43-45页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
| 2.1.2 仪器 | 第44-45页 |
| 2.2 实验方法 | 第45-51页 |
| 2.2.1 ASF、RG-Ⅰ-4、MCP和半乳寡糖的制备 | 第45-46页 |
| 2.2.2 鸡血红细胞及galectin-3 的制备 | 第46-47页 |
| 2.2.3 galectin-3 各种突变体的制备 | 第47页 |
| 2.2.4 总糖含量测定 | 第47页 |
| 2.2.5 分子量及均一性分析 | 第47-48页 |
| 2.2.6 半乳寡糖纯度分析 | 第48页 |
| 2.2.7 多糖和ASF的荧光标记 | 第48页 |
| 2.2.8 核磁共振分析 | 第48-49页 |
| 2.2.9 galectin-3 诱导的红细胞凝集实验 | 第49页 |
| 2.2.10 竞争性荧光酶联免疫法(c FLISA) | 第49-50页 |
| 2.2.11 荧光偏振法(FP) | 第50页 |
| 2.2.12 生物膜干涉法(BLI) | 第50-51页 |
| 2.2.13 表面等离子共振法(SPR) | 第51页 |
| 2.3 实验结果 | 第51-67页 |
| 2.3.1 样品和探针的制备 | 第51-58页 |
| 2.3.2 表面等离子共振法（SPR）结果 | 第58-59页 |
| 2.3.3 生物膜干涉（BLI）结果 | 第59-63页 |
| 2.3.4 竞争性荧光酶联免疫法(c FLISA)结果 | 第63-65页 |
| 2.3.5 荧光偏振法(FP)结果 | 第65-67页 |
| 2.3.6 galectin-3 介导的鸡红细胞凝集实验(G3H)结果 | 第67页 |
| 2.4 讨论 | 第67-70页 |
| 2.5 本章小结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-73页 |
| 第三章 MCP的制备、分级及理化性质研究 | 第73-95页 |
| 3.1 材料，试剂与仪器 | 第73-75页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第73-74页 |
| 3.1.2 仪器 | 第74-75页 |
| 3.2 实验方法 | 第75-79页 |
| 3.2.1 MCP的制备 | 第75页 |
| 3.2.2 鸡血红细胞及galectin-3 的制备 | 第75页 |
| 3.2.3 MCP的离子交换柱层析 | 第75-76页 |
| 3.2.4 MCP的凝胶过滤层析 | 第76页 |
| 3.2.5 总糖含量测定 | 第76页 |
| 3.2.6 糖醛酸含量测定 | 第76-77页 |
| 3.2.7 单糖组成分析 | 第77-78页 |
| 3.2.8 分子量及均一性分析 | 第78页 |
| 3.2.9 硫代巴比妥酸法 | 第78页 |
| 3.2.10 核磁共振分析 | 第78页 |
| 3.2.11 galectin-3 诱导的红细胞凝集实验 | 第78-79页 |
| 3.3 实验结果 | 第79-89页 |
| 3.3.1 制备MCP反应温度和p H的优化 | 第79-81页 |
| 3.3.2 MCP初步分级 | 第81页 |
| 3.3.3 MCP离子交换柱层析 | 第81-83页 |
| 3.3.4 MCP凝胶过滤层析 | 第83-84页 |
| 3.3.5 MCP各子级分的分子量和均一性 | 第84页 |
| 3.3.6 MCP各级分的单糖组成 | 第84-85页 |
| 3.3.7 MCP各均一级分的核磁共振结果 | 第85-87页 |
| 3.3.8 MCP-3Sb结构的进一步研究 | 第87-89页 |
| 3.4 讨论 | 第89-90页 |
| 3.4.1 MCP制备条件的优化及其大量制备 | 第89页 |
| 3.4.2 MCP的分离纯化及理化性质 | 第89-90页 |
| 3.5 本章小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-95页 |
| 第四章 MCP及其子级分抑制galectin-3 活性的研究 | 第95-101页 |
| 4.1 材料，试剂与仪器 | 第95-96页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第95页 |
| 4.1.2 仪器 | 第95-96页 |
| 4.2 实验方法 | 第96页 |
| 4.2.1 MCP及其各子级分的制备 | 第96页 |
| 4.2.2 鸡血红细胞及galectin-3 的制备 | 第96页 |
| 4.2.3 galectin-3 诱导的红细胞凝集实验 | 第96页 |
| 4.3 实验结果 | 第96-98页 |
| 4.3.1 MCP-0.5M-S和MCP-0.5M-P的活性 | 第96-97页 |
| 4.3.2 MCP各子级分的活性 | 第97-98页 |
| 4.4 讨论 | 第98-99页 |
| 4.5 本章小结 | 第99-100页 |
| 参考文献 | 第100-101页 |
| 第五章 MCP中HG型和RG-Ⅰ型果胶协同抑制galectin-3 作用的研究 | 第101-129页 |
| 5.1 材料，试剂与仪器 | 第101-103页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第101-102页 |
| 5.1.2 仪器 | 第102-103页 |
| 5.2 实验方法 | 第103-108页 |
| 5.2.1 糖样的制备 | 第103页 |
| 5.2.2 galectin-3 及其各种突变体的制备 | 第103-104页 |
| 5.2.3 糖含量测定 | 第104页 |
| 5.2.4 单糖组成分析 | 第104页 |
| 5.2.5 分子量及均一性分析 | 第104页 |
| 5.2.6 多糖和ASF的荧光标记 | 第104页 |
| 5.2.7 多糖粒径分析 | 第104页 |
| 5.2.8 核磁共振分析 | 第104-105页 |
| 5.2.9 galectin-3 诱导的红细胞凝集实验 | 第105页 |
| 5.2.10 荧光酶联免疫法(FLISA) | 第105-106页 |
| 5.2.11 荧光光谱分析 | 第106页 |
| 5.2.12 圆二色谱分析 | 第106-107页 |
| 5.2.13 生物膜干涉法(BLI) | 第107页 |
| 5.2.14 多糖抑制由galectin-3 诱导的T细胞凋亡实验 | 第107-108页 |
| 5.3 实验结果 | 第108-124页 |
| 5.3.1 糖样的制备 | 第108-111页 |
| 5.3.2 MCP-2a、-2b和-3P协同抑制galectin-3 的活性 | 第111-115页 |
| 5.3.3 MCP-2a和HG型果胶单独及协同结合galectin-3 | 第115-119页 |
| 5.3.4 MCP-2a和HG型果胶与galectin-3 结合的方式不同 | 第119-124页 |
| 5.4 讨论 | 第124-126页 |
| 5.5 本章小结 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-129页 |
| 结论 | 第129-133页 |
| 致谢 | 第133-135页 |
| 在读期间公开发表论文及著作情况 | 第135页 |
