英文缩写符号及中英文对照表 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
1 引言 | 第11-25页 |
1.1 研究背景 | 第11-13页 |
1.2 永生花概述 | 第13-18页 |
1.2.1 永生花的起源 | 第13页 |
1.2.2 永生花的制作 | 第13-14页 |
1.2.3 永生花的保存 | 第14-15页 |
1.2.4 永生花的发展优势 | 第15页 |
1.2.5 永生花发展现状 | 第15-17页 |
1.2.6 我国永生花发展前景展望 | 第17-18页 |
1.3 月季切花生理衰败机理 | 第18-22页 |
1.3.1 月季切花水分代谢 | 第18-19页 |
1.3.2 月季切花的大分子物质代谢 | 第19-20页 |
1.3.3 月季切花内源激素的调控 | 第20-21页 |
1.3.4 月季切花细胞膜透性及丙二醛含量的变化 | 第21-22页 |
1.3.5 月季切花呼吸代谢 | 第22页 |
1.3.6 pH值及花色 | 第22页 |
1.4 本课题研究的目的与意义 | 第22-23页 |
1.5 本课题研究的内容 | 第23-24页 |
1.6 技术路线 | 第24-25页 |
2 材料与方法 | 第25-34页 |
2.1 材料与处理 | 第25页 |
2.2 实验方法 | 第25-26页 |
2.3 测定项目与方法 | 第26-34页 |
2.3.1 花瓣徒手切片 | 第26页 |
2.3.2 花朵直径及花枝鲜重的测定 | 第26-27页 |
2.3.3 含水量的测定 | 第27页 |
2.3.4 pH值的测定 | 第27页 |
2.3.5 花青素的测定 | 第27页 |
2.3.6 膜相对透性的测定 | 第27页 |
2.3.7 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第27-28页 |
2.3.8 可溶性糖含量测定 | 第28-29页 |
2.3.9 可溶性蛋白的测定 | 第29-30页 |
2.3.10 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第30-31页 |
2.3.11 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第31页 |
2.3.12 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第31-32页 |
2.3.13 感官评价 | 第32页 |
2.3.14 永生花重量 | 第32-33页 |
2.3.15 数据处理 | 第33-34页 |
3 结果与分析 | 第34-44页 |
3.1 月季鲜切花采后生理衰败机理研究 | 第34-38页 |
3.1.1 花瓣徒手切片观察 | 第34页 |
3.1.2 花蕾形态变化及瓶插寿命 | 第34页 |
3.1.3 花蕾花径及鲜重的变化 | 第34-35页 |
3.1.4 花蕾含水量变化 | 第35页 |
3.1.5 花色变化 | 第35-36页 |
3.1.6 花瓣细胞膜系统的变化 | 第36-37页 |
3.1.7 花瓣细胞内含物的变化 | 第37页 |
3.1.8 花瓣细胞酶系统的变化 | 第37-38页 |
3.2 不同脱水工艺对月季花瓣外观及结构的影响 | 第38-40页 |
3.2.1 花瓣含水量变化 | 第38-39页 |
3.2.2 花瓣徒手切片观察 | 第39页 |
3.2.3 感官评价对比 | 第39-40页 |
3.3 不同溶液置换对月季永生花花瓣保真度的影响 | 第40-43页 |
3.3.1 不同处理对花瓣内溶液置换后醇类含量差异 | 第40页 |
3.3.2 永生花重量变化 | 第40-41页 |
3.3.3 永生花花瓣感官评价 | 第41-43页 |
3.4 不同色素种类及浓度对月季永生花外观的影响 | 第43-44页 |
3.4.1 颜色调配 | 第43页 |
3.4.2 花瓣调色后评价 | 第43-44页 |
4 讨论 | 第44-47页 |
4.1 永生花花材选择与切花花材生理衰败的关系 | 第44-45页 |
4.2 花瓣组织细胞脱水与溶液置换程度影响永生花外观美感 | 第45-46页 |
4.3 对永生花制作工艺进一步优化的探讨 | 第46-47页 |
5 结论 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-55页 |
图版说明 | 第55-60页 |
致谢 | 第60页 |