摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第12-30页 |
1 水稻白叶枯病研究进展 | 第12-19页 |
1.1 水稻白叶枯病 | 第12页 |
1.2 水稻白叶枯病发病症状 | 第12-13页 |
1.3 水稻白叶枯病病原菌 | 第13-14页 |
1.4 水稻白叶枯病病害循环 | 第14-15页 |
1.5 水稻白叶枯病综合防治 | 第15-19页 |
1.5.1 农业防治 | 第15页 |
1.5.2 抗病育种 | 第15-16页 |
1.5.3 生物防治 | 第16页 |
1.5.4 化学防治 | 第16-19页 |
2 噻枯唑研究进展 | 第19-21页 |
2.1 噻唑类杀菌剂 | 第19页 |
2.2 噻枯唑基本特性 | 第19-20页 |
2.3 噻枯唑对水稻白叶枯作用机制研究 | 第20页 |
2.4 水稻白叶枯病菌对噻枯唑抗性研究 | 第20-21页 |
3 胞外多糖及其合成基因功能研究 | 第21-24页 |
3.1 胞外多糖基本结构 | 第21-22页 |
3.2 胞外多糖的性质和应用 | 第22页 |
3.3 胞外多糖生物合成 | 第22-23页 |
3.4 胞外多糖与致病性 | 第23-24页 |
4 本文研究的目的意义 | 第24-25页 |
参考文献 | 第25-30页 |
第二章 噻枯唑对水稻白叶枯病菌胞外多糖产量影响 | 第30-40页 |
1 材料与方法 | 第31-36页 |
1.1 供试菌株及定量引物 | 第31-32页 |
1.2 供试培养基与试剂 | 第32-33页 |
1.2.1 供试培养基 | 第32-33页 |
1.2.2 供试试剂 | 第33页 |
1.2.3 噻枯唑母液配置 | 第33页 |
1.3 菌体培养条件和保存 | 第33页 |
1.3.1 水稻白叶枯病菌的培养 | 第33页 |
1.3.2 水稻白叶枯病菌菌株保存 | 第33页 |
1.4 噻枯唑处理及胞外多糖产量测定 | 第33-34页 |
1.4.1 噻枯唑处理及水稻白叶枯病菌胞外多糖的提取 | 第33-34页 |
1.4.2 胞外多糖含量的测定 | 第34页 |
1.5 噻枯唑对胞外多糖基因簇表达的分析 | 第34-36页 |
1.5.1 噻枯唑处理及水稻白叶枯病菌RNA的提取 | 第34-35页 |
1.5.2 反转录反应 | 第35-36页 |
1.5.3 荧光定量PCR | 第36页 |
1.6 数据处理与分析方法 | 第36页 |
2 结果 | 第36-38页 |
2.1 噻枯唑处理对胞外多糖产量影响 | 第36-37页 |
2.2 噻枯唑处理对胞外多糖基因簇表达量影响 | 第37-38页 |
3 讨论 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-40页 |
第三章 水稻白叶枯病菌胞外多糖gum基因簇的克隆与功能研究 | 第40-66页 |
1 材料与方法 | 第41-53页 |
1.1 供试菌株、质粒及引物 | 第41-44页 |
1.2 供试培养基和试剂 | 第44-45页 |
1.2.1 培养基 | 第44-45页 |
1.2.2 试剂、酶与试剂盒 | 第45页 |
1.3 菌体保存和培养 | 第45-46页 |
1.3.1 水稻白叶枯病菌的培养 | 第45页 |
1.3.2 水稻白叶枯病菌菌株保存 | 第45页 |
1.3.3 大肠杆菌的培养 | 第45-46页 |
1.3.4 大肠杆菌菌株保存 | 第46页 |
1.4 细菌无标记缺失突变体的构建 | 第46-52页 |
1.4.1 细菌基因组DNA的提取 | 第46-47页 |
1.4.2 PCR反应 | 第47页 |
1.4.3 DNA凝胶电泳和回收 | 第47-48页 |
1.4.4 胶回收产物酶切、纯化、连接 | 第48-49页 |
1.4.5 大肠杆菌转化 | 第49-50页 |
1.4.6 水稻白叶枯病菌转化 | 第50-52页 |
1.5 缺失突变体表型测定 | 第52-53页 |
1.5.1 缺失突变体菌落形态测定 | 第52页 |
1.5.2 致病力测定 | 第52页 |
1.5.3 游动性测定 | 第52页 |
1.5.4 胞外纤维索酶产量测定 | 第52-53页 |
1.5.5 基本培养基生长曲线测定 | 第53页 |
1.5.6 胞外多糖产量测定 | 第53页 |
1.5.7 生物膜合成测定 | 第53页 |
1.6 数据处理与分析方法 | 第53页 |
2 结果 | 第53-61页 |
2.1 gun基因簇基因缺失突变体 | 第53-56页 |
2.1.1 胞外多糖基因簇缺失突变载体 | 第53-54页 |
2.1.2 胞外多糖基因簇缺失突变体 | 第54-56页 |
2.2 gum缺失突变体菌落形态 | 第56-57页 |
2.3 gum缺失突变体的致病力 | 第57页 |
2.4 gum缺失突变体的游动性变化 | 第57-58页 |
2.5 gum缺失突变体的胞外纤维素酶活性变化 | 第58-59页 |
2.6 gum缺失突变体在基本培养基上的生长速率变化 | 第59-60页 |
2.7 gum缺失突变体的胞外多糖产量变化 | 第60页 |
2.8 gum缺失突变体的生物膜合成变化 | 第60-61页 |
3 讨论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-66页 |
第四章 水稻白叶枯病菌胞外多糖基因簇对噻枯唑药敏性影响 | 第66-74页 |
1 材料与方法 | 第67-69页 |
1.1 供试菌株 | 第67页 |
1.2 供试培养基和试剂 | 第67-68页 |
1.2.1 培养基 | 第67-68页 |
1.2.2 供试试剂 | 第68页 |
1.2.3 噻枯唑、敌枯唑和拌种灵药剂母液配置 | 第68页 |
1.3 离体下噻枯唑药敏性测定 | 第68页 |
1.4 离体下敌枯唑药敏性测定 | 第68页 |
1.5 离体下拌种灵药敏性测定 | 第68-69页 |
1.6 数据处理与分析方法 | 第69页 |
2 结果 | 第69-71页 |
2.1 gum缺失突变体在离体下对噻枯唑的药敏性 | 第69-70页 |
2.2 gum缺失突变体在离体下对敌枯唑的药敏性 | 第70页 |
2.3 gum缺失突变体在离体下对拌种灵的药敏性 | 第70-71页 |
3 讨论 | 第71-72页 |
参考文献 | 第72-74页 |
全文小结 | 第74-76页 |
附录 | 第76-82页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第82-84页 |
致谢 | 第84-86页 |
本论文研究受资助项目 | 第86页 |