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噻枯唑对水稻白叶枯病菌(Xanthomonas oryzae pv.oryzae)胞外多糖的影响研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-11页
第一章 文献综述第12-30页
    1 水稻白叶枯病研究进展第12-19页
        1.1 水稻白叶枯病第12页
        1.2 水稻白叶枯病发病症状第12-13页
        1.3 水稻白叶枯病病原菌第13-14页
        1.4 水稻白叶枯病病害循环第14-15页
        1.5 水稻白叶枯病综合防治第15-19页
            1.5.1 农业防治第15页
            1.5.2 抗病育种第15-16页
            1.5.3 生物防治第16页
            1.5.4 化学防治第16-19页
    2 噻枯唑研究进展第19-21页
        2.1 噻唑类杀菌剂第19页
        2.2 噻枯唑基本特性第19-20页
        2.3 噻枯唑对水稻白叶枯作用机制研究第20页
        2.4 水稻白叶枯病菌对噻枯唑抗性研究第20-21页
    3 胞外多糖及其合成基因功能研究第21-24页
        3.1 胞外多糖基本结构第21-22页
        3.2 胞外多糖的性质和应用第22页
        3.3 胞外多糖生物合成第22-23页
        3.4 胞外多糖与致病性第23-24页
    4 本文研究的目的意义第24-25页
    参考文献第25-30页
第二章 噻枯唑对水稻白叶枯病菌胞外多糖产量影响第30-40页
    1 材料与方法第31-36页
        1.1 供试菌株及定量引物第31-32页
        1.2 供试培养基与试剂第32-33页
            1.2.1 供试培养基第32-33页
            1.2.2 供试试剂第33页
            1.2.3 噻枯唑母液配置第33页
        1.3 菌体培养条件和保存第33页
            1.3.1 水稻白叶枯病菌的培养第33页
            1.3.2 水稻白叶枯病菌菌株保存第33页
        1.4 噻枯唑处理及胞外多糖产量测定第33-34页
            1.4.1 噻枯唑处理及水稻白叶枯病菌胞外多糖的提取第33-34页
            1.4.2 胞外多糖含量的测定第34页
        1.5 噻枯唑对胞外多糖基因簇表达的分析第34-36页
            1.5.1 噻枯唑处理及水稻白叶枯病菌RNA的提取第34-35页
            1.5.2 反转录反应第35-36页
            1.5.3 荧光定量PCR第36页
        1.6 数据处理与分析方法第36页
    2 结果第36-38页
        2.1 噻枯唑处理对胞外多糖产量影响第36-37页
        2.2 噻枯唑处理对胞外多糖基因簇表达量影响第37-38页
    3 讨论第38-39页
    参考文献第39-40页
第三章 水稻白叶枯病菌胞外多糖gum基因簇的克隆与功能研究第40-66页
    1 材料与方法第41-53页
        1.1 供试菌株、质粒及引物第41-44页
        1.2 供试培养基和试剂第44-45页
            1.2.1 培养基第44-45页
            1.2.2 试剂、酶与试剂盒第45页
        1.3 菌体保存和培养第45-46页
            1.3.1 水稻白叶枯病菌的培养第45页
            1.3.2 水稻白叶枯病菌菌株保存第45页
            1.3.3 大肠杆菌的培养第45-46页
            1.3.4 大肠杆菌菌株保存第46页
        1.4 细菌无标记缺失突变体的构建第46-52页
            1.4.1 细菌基因组DNA的提取第46-47页
            1.4.2 PCR反应第47页
            1.4.3 DNA凝胶电泳和回收第47-48页
            1.4.4 胶回收产物酶切、纯化、连接第48-49页
            1.4.5 大肠杆菌转化第49-50页
            1.4.6 水稻白叶枯病菌转化第50-52页
        1.5 缺失突变体表型测定第52-53页
            1.5.1 缺失突变体菌落形态测定第52页
            1.5.2 致病力测定第52页
            1.5.3 游动性测定第52页
            1.5.4 胞外纤维索酶产量测定第52-53页
            1.5.5 基本培养基生长曲线测定第53页
            1.5.6 胞外多糖产量测定第53页
            1.5.7 生物膜合成测定第53页
        1.6 数据处理与分析方法第53页
    2 结果第53-61页
        2.1 gun基因簇基因缺失突变体第53-56页
            2.1.1 胞外多糖基因簇缺失突变载体第53-54页
            2.1.2 胞外多糖基因簇缺失突变体第54-56页
        2.2 gum缺失突变体菌落形态第56-57页
        2.3 gum缺失突变体的致病力第57页
        2.4 gum缺失突变体的游动性变化第57-58页
        2.5 gum缺失突变体的胞外纤维素酶活性变化第58-59页
        2.6 gum缺失突变体在基本培养基上的生长速率变化第59-60页
        2.7 gum缺失突变体的胞外多糖产量变化第60页
        2.8 gum缺失突变体的生物膜合成变化第60-61页
    3 讨论第61-63页
    参考文献第63-66页
第四章 水稻白叶枯病菌胞外多糖基因簇对噻枯唑药敏性影响第66-74页
    1 材料与方法第67-69页
        1.1 供试菌株第67页
        1.2 供试培养基和试剂第67-68页
            1.2.1 培养基第67-68页
            1.2.2 供试试剂第68页
            1.2.3 噻枯唑、敌枯唑和拌种灵药剂母液配置第68页
        1.3 离体下噻枯唑药敏性测定第68页
        1.4 离体下敌枯唑药敏性测定第68页
        1.5 离体下拌种灵药敏性测定第68-69页
        1.6 数据处理与分析方法第69页
    2 结果第69-71页
        2.1 gum缺失突变体在离体下对噻枯唑的药敏性第69-70页
        2.2 gum缺失突变体在离体下对敌枯唑的药敏性第70页
        2.3 gum缺失突变体在离体下对拌种灵的药敏性第70-71页
    3 讨论第71-72页
    参考文献第72-74页
全文小结第74-76页
附录第76-82页
攻读硕士期间发表的论文第82-84页
致谢第84-86页
本论文研究受资助项目第86页

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