| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 本文所用主要缩略词 | 第10-12页 |
| 上篇 文献综述 | 第12-30页 |
| 第一章 棉花色素腺体及棉酚的研究进展 | 第12-28页 |
| 1 棉花色素腺体的多样性 | 第12-14页 |
| 2 棉花腺体形成基因的遗传研究 | 第14-16页 |
| 3 海岛棉显性无腺体基因Gl_2~e基因的遗传研究 | 第16-17页 |
| 4 腺体发育相关基因的克隆 | 第17-18页 |
| 5 棉酚的结构、用途 | 第18-20页 |
| 6 棉酚生物合成及相关萜类合成基因和调控因子研究 | 第20-23页 |
| 7 棉酚和棉花腺体的关系研究 | 第23-24页 |
| 8 控制腺体形成基因在低酚棉育种中的利用 | 第24-28页 |
| 本研究的目的及意义 | 第28-30页 |
| 下篇 研究报告 | 第30-66页 |
| 第二章 棉花显性无腺体基因Gl_2~e的精细定位 | 第30-38页 |
| 1 材料与方法 | 第30-34页 |
| 1.1 实验材料及群体构建 | 第30-31页 |
| 1.2 棉花DNA的提取 | 第31-32页 |
| 1.3 SSR引物的来源与标记分析 | 第32-33页 |
| 1.4 SSR扩增产物的PAGE/银染检测 | 第33-34页 |
| 1.5 分离比检测、基因型数据收集和遗传图谱的构建 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-36页 |
| 2.1 棉花显性无腺体性状的遗传分析 | 第34-35页 |
| 2.2 显性无腺体基因Gl_2~e的精细定位 | 第35-36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 第三章 Gl_2~e基因的克隆与功能验证 | 第38-66页 |
| 1 材料与方法 | 第39-46页 |
| 1.1 植物材料及生长条件 | 第39页 |
| 1.2 常用质粒载体 | 第39-40页 |
| 1.3 酶与试剂盒 | 第40页 |
| 1.4 培养基 | 第40页 |
| 1.5 棉花叶片RNA的提取 | 第40页 |
| 1.6 mRNA逆转录反应 | 第40-41页 |
| 1.7 半定量分析 | 第41页 |
| 1.8 大肠杆菌感受态的制备 | 第41-42页 |
| 1.9 基因克隆 | 第42-43页 |
| 1.10 荧光实时定量PCR | 第43-44页 |
| 1.11 病毒介导的基因沉默技术(Virus interfering gene silencing,VIGS) | 第44-45页 |
| 1.12 石蜡切片 | 第45页 |
| 1.13 棉酚含量测定 | 第45-46页 |
| 1.14 Illumina HiSeq~(TM) 2000 System测序表达谱 | 第46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-62页 |
| 2.1 候选Gl_2~e基因的预测 | 第46-47页 |
| 2.2 候选基因的半定量分析 | 第47-48页 |
| 2.3 Gl_2~e基因再定位及基因全长克隆 | 第48-50页 |
| 2.4 Gl_2~e基因的启动子结构和活性分析 | 第50-52页 |
| 2.5 Gl_2~e基因的组织特异性表达 | 第52-53页 |
| 2.6 病毒介导的VIGS技术沉默Gl_2~e基因 | 第53-56页 |
| 2.7 VIGS干扰后叶片组织的石蜡切片 | 第56-57页 |
| 2.8 VIGS干扰后叶片中棉酚含量的测定 | 第57-58页 |
| 2.9 VIGS干扰后叶片的转录组分析 | 第58-62页 |
| 3 讨论 | 第62-66页 |
| 3.1 腺体基因的图位克隆 | 第62-63页 |
| 3.2 棉酚和腺体的关系 | 第63-66页 |
| 全文结论 | 第66-68页 |
| 创新点 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 附录 | 第80-96页 |
| 致谢 | 第96-98页 |
| 攻读博士学位期间发表及待发表论文 | 第98页 |
