摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
前言 | 第9-10页 |
第一章 地榆有效部位升高白细胞活性筛选研究 | 第10-17页 |
1 提取分离 | 第11-12页 |
1.1 仪器与试药 | 第11页 |
1.1.1 仪器 | 第11页 |
1.1.2 试剂 | 第11页 |
1.1.3 饮片 | 第11页 |
1.2 方法与结果 | 第11-12页 |
2 地榆不同极性部位活性筛选 | 第12-16页 |
2.1 仪器与试药 | 第12-13页 |
2.1.1 仪器 | 第12-13页 |
2.1.2 试药 | 第13页 |
2.1.3 样品 | 第13页 |
2.1.4 实验动物 | 第13页 |
2.2 方法与结果 | 第13-16页 |
2.2.1 实验分组及给药 | 第13页 |
2.2.2 动物模型制备及标本采集 | 第13-14页 |
2.2.3 检测指标及方法 | 第14页 |
2.2.4 实验结果 | 第14-15页 |
2.2.5 讨论 | 第15-16页 |
3 本章小结 | 第16-17页 |
第二章 地榆有效组分的制备及活性筛选 | 第17-21页 |
1 地榆有效组分的制备 | 第17-18页 |
1.1 仪器与试剂 | 第17页 |
1.1.1 仪器与材料 | 第17页 |
1.1.2 试药 | 第17页 |
1.1.3 样品 | 第17页 |
1.2 方法与结果 | 第17-18页 |
2 地榆有效组分的活性筛选 | 第18-21页 |
2.1 仪器与试药 | 第18-19页 |
2.1.1 仪器 | 第18页 |
2.1.2 试药 | 第18页 |
2.1.3 样品 | 第18-19页 |
2.1.4 实验动物 | 第19页 |
2.2 方法与结果 | 第19-21页 |
2.2.1 实验分组及给药 | 第19页 |
2.2.2 动物模型制备及标本采集 | 第19页 |
2.2.3 检测指标及方法选择 | 第19-20页 |
2.2.4 实验结果 | 第20页 |
2.2.5 讨论 | 第20-21页 |
3 本章小结 | 第21页 |
第三章 有效组分化学成分的分离与纯化 | 第21-35页 |
1 仪器与试剂 | 第22-23页 |
1.1 仪器与材料 | 第22页 |
1.2 试剂 | 第22页 |
1.3 样品 | 第22-23页 |
2 化学成分分离与制备 | 第23-25页 |
3 化学成分结构鉴定 | 第25-35页 |
4 本章小结 | 第35页 |
第四章 单体化合物的促M-NFS-60细胞增殖活性筛选 | 第35-42页 |
1 材料与试样 | 第37页 |
1.1 材料 | 第37页 |
1.2 细胞 | 第37页 |
1.3 样品 | 第37页 |
2 细胞培养 | 第37-38页 |
3 药物干预 | 第38页 |
4 检测指标 | 第38-39页 |
5 实验结果 | 第39-41页 |
5.1 MTT法测定结果 | 第39-40页 |
5.2 CCK-8测定结果 | 第40-41页 |
6 讨论 | 第41-42页 |
第五章 结论与创新 | 第42-45页 |
1 主要研究结果 | 第42页 |
2 本文创新之处 | 第42-43页 |
3 本文不足之处 | 第43-44页 |
4 展望 | 第44-45页 |
第六章 综述 | 第45-50页 |
1 地榆化学成分研究现状 | 第45-46页 |
2 地榆止血研究应用 | 第46-47页 |
3 临床上对于骨髓抑制治疗应用研究概况 | 第47-48页 |
4 地榆促造血作用应用研究 | 第48-50页 |
参考文献 | 第50-54页 |
附图 | 第54-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第80-81页 |