| 摘要 | 第1-12页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-36页 |
| 1．1 杂种小麦研究概况 | 第15-16页 |
| 1．2 小麦杂种优势利用途径 | 第16-19页 |
| 1．2．1 细胞质雄性不育及育性恢复系统（Cytoplasm Male Sterility缩写CMS） | 第16页 |
| 1．2．2 化学杂交剂诱导小麦雄性不育（Chemical Hybridizing Agents缩写为CHA） | 第16-17页 |
| 1．2．3 核基因雄性不育（Nucleus Male Sterility缩写为NMS） | 第17页 |
| 1．2．4 光温敏雄性不育（Photo-thermo-sensitive Male Sterility） | 第17-18页 |
| 1．2．5 利用生物技术创制小麦雄性不育 | 第18-19页 |
| 1．2．5．1 创造植物雄性不育系的方法 | 第18-19页 |
| 1．2．5．2 小麦转基因雄性不育研究 | 第19页 |
| 1．3 小麦杂种优势利用各种途径的优缺点 | 第19-21页 |
| 1．3．1 CMS途径的优缺点 | 第19-20页 |
| 1．3．2 CHA途径的优缺点 | 第20页 |
| 1．3．3 NMS途径的优缺点 | 第20页 |
| 1．3．4 光温敏雄性不育途径的优缺点 | 第20-21页 |
| 1．4 CHA及CHA杂种小麦研究 | 第21-36页 |
| 1．4．1 CHA的中文名称 | 第21页 |
| 1．4．2 CHA的种类 | 第21-22页 |
| 1．4．3 CHA的特点 | 第22-23页 |
| 1．4．4 CHA的研究进展 | 第23-25页 |
| 1．4．5 CHA杂种小麦的研究进展 | 第25-26页 |
| 1．4．6 CHA诱导小麦雄性不育机理 | 第26-33页 |
| 1．4．6．1 CHA在小麦植株体内运输 | 第26页 |
| 1．4．6．2 CHA在植株体内分布 | 第26页 |
| 1．4．6．3 CHA诱导小麦雄性不育细胞学研究 | 第26-28页 |
| 1．4．6．4 CHA诱导小麦雄性不育的生化机理研究 | 第28-33页 |
| 1．4．7 高等植物性别表达的单激素调控研究进展 | 第33-34页 |
| 1．4．8 基因表达与雄性不育 | 第34-35页 |
| 1．4．9 影响CHA杂种小麦发展的关键因素 | 第35-36页 |
| 第二章 化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育小孢子发育的超微结构观察 | 第36-40页 |
| 2．1 材料和方法 | 第36-37页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第36页 |
| 2．1．2 实验方法 | 第36-37页 |
| 2．2 结果与分析 | 第37-38页 |
| 2．2．1 小麦CMS雄性不育，GENESIS诱导雄性不育和雄性可育花粉粒内壁的结构变化 | 第37页 |
| 2．2．1．1 小麦雄性可育花粉粒内壁结构 | 第37页 |
| 2．2．1．2 小麦CMS雄性不育花粉粒内壁结构 | 第37页 |
| 2．2．1．3 GENESIS诱导小麦雄性不育花粉粒的内壁结构 | 第37页 |
| 2．2．2 小麦CMS雄性不育，GENESIS诱导雄性不育和雄性可育花粉粒液泡系的动态变化 | 第37-38页 |
| 2．2．2．1 小麦CMS雄性不育花粉粒和雄性可育花粉粒液泡系的动态变化比较 | 第37-38页 |
| 2．2．2．2 经GENESIS诱导小麦雄性不育花粉粒和可育花粉粒液泡系动态变化 | 第38页 |
| 2．2．3 小麦CMS雄性不育、GENESIS诱导雄性不育和雄性可育花粉粒中线粒体和质体等细胞器变化以及淀粉粒形成的变化 | 第38页 |
| 2．3 讨论 | 第38-40页 |
| 2．3．1 GENESIS诱导小麦花粉败育与其内壁结构的变化 | 第38-39页 |
| 2．3．2 花粉粒液泡系变化与花粉粒雄性不育的关系 | 第39页 |
| 2．3．3 能量物质代谢与花粉粒败育的关系 | 第39-40页 |
| 第三章 化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育过程中幼穗中乙烯含量变化研究 | 第40-44页 |
| 3．1 材料与方法 | 第41页 |
| 3．1．1 实验材料 | 第41页 |
| 3．1．2 内源乙烯释放量的测定 | 第41页 |
| 3．2 结果与分析 | 第41-43页 |
| 3．2．1 经GENESIS处理后，西农1376的雄性不育率调查 | 第41-42页 |
| 3．2．2 经GENESIS处理后，雄性不育与正常对照的西农1376小孢子发育不同阶段幼穗组织中乙烯释放量变化 | 第42-43页 |
| 3．3．3 经GENESIS诱导后，小麦幼穗组织中乙烯释放量与小麦育性表达的关系 | 第43页 |
| 3．3 讨论 | 第43-44页 |
| 第四章 新型化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育过程中幼穗，花药中SOD、CAT和POD酶活性变化研究 | 第44-49页 |
| 4．1 材料与方法 | 第44-45页 |
| 4．1．1 实验材料 | 第44页 |
| 4．1．2 实验材料取样 | 第44-45页 |
| 4．1．3 酶液提取 | 第45页 |
| 4．1．4 酶活性测定 | 第45页 |
| 4．1．4．1 SOD酶活性测定 | 第45页 |
| 4．1．4．2 POD酶活性测定 | 第45页 |
| 4．1．4．3 CAT酶活性测定 | 第45页 |
| 4．2 结果与分析 | 第45-47页 |
| 4．2．1 GENESIS对SOD酶活性的影响 | 第45-46页 |
| 4．2．2 GENESIS对POD酶活性的影响 | 第46页 |
| 4．2．3 GENESIS对CAT酶活性的影响 | 第46-47页 |
| 4．3 讨论 | 第47-49页 |
| 4．3．1 植物雄性不育与膜脂过氧化加剧的关系 | 第47页 |
| 4．3．2 化学物质诱导植物产生雄性不育与活性氧代谢 | 第47-48页 |
| 4．3．3 GENESIS诱导植物雄性不育的机理 | 第48-49页 |
| 第五章 新型化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育过程中幼穗和花药中蛋白质代谢研究 | 第49-51页 |
| 5．1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 5．1．1 实验材料 | 第49页 |
| 5．1．2 实验材料取样 | 第49页 |
| 5．1．3 酶液提取 | 第49-50页 |
| 5．1．4 可溶性蛋白质测定 | 第50页 |
| 5．2 结果与分析 | 第50页 |
| 5．3 讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 乙烯合成抑制剂对小麦雄性不育系育性调控研究 | 第51-55页 |
| 6．1 材料与方法 | 第51-52页 |
| 6．1．1 实验材料 | 第51页 |
| 6．1．2 乙烯合成抑制齐U处理浓度和方法 | 第51-52页 |
| 6．1．2．1 乙烯合成抑制剂处理浓度 | 第51页 |
| 6．1．2．2 处理时期和方法 | 第51页 |
| 6．1．2．3 乙烯合成抑制剂对内源乙烯释放量影响的测定 | 第51-52页 |
| 6．2 结果与分析 | 第52-53页 |
| 6．2．1 乙烯合成抑制剂对V-59A育性调控的影响 | 第52-53页 |
| 6．2．2 乙烯合成抑制剂对V-59A内源乙烯释放的影响 | 第53页 |
| 6．3 讨论 | 第53-55页 |
| 6．3．1 利用乙烯合成抑制剂对植物细胞质雄性不育育性调控研究 | 第53-54页 |
| 6．3．2 利用基因技术对植物内源乙烯抑制的研究 | 第54页 |
| 6．3．3 乙烯受体抑制剂对植物育性的调控机理 | 第54页 |
| 6．3．4 利用化学物质对雄性不育系育性调控的展望 | 第54-55页 |
| 第七章 讨论 | 第55-62页 |
| 7．1 GENESIS诱导小麦雄性不育的细胞形态学机理 | 第55-57页 |
| 7．2 物质能量供应与花粉粒败育 | 第57页 |
| 7．3 化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育与膜脂过氧化的关系 | 第57页 |
| 7．4 化学杂交剂GENESIS诱导小麦雄性不育与乙烯的关系 | 第57-58页 |
| 7．5 化学杂交剂GENESIS对小麦体内蛋白质代谢的影响 | 第58页 |
| 7．6 利用乙烯合成（受体）抑制对小麦雄性不育的育性调控 | 第58-60页 |
| 7．7 花粉发育有关基因的时空特异性表达 | 第60-61页 |
| 7．8 利用生物技术创造植物雄性不育系及雄性不育系的化学保持 | 第61-62页 |
| 第八章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-79页 |
| 个人简介 | 第79-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 图版说明 | 第83-86页 |
