五叶草莓和带病毒凤梨草莓的超低温保存及其遗传稳定性分析
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词表（Abbreviations） | 第8-11页 |
| 1 前言 | 第11-25页 |
| ·概述 | 第11-13页 |
| ·草莓属植物简介 | 第11页 |
| ·凤梨草莓 | 第11-12页 |
| ·五叶草莓简介 | 第12-13页 |
| ·野生植物种质资源保存的重要意义 | 第13页 |
| ·草莓脱毒的重要性 | 第13-15页 |
| ·超低温保存技术 | 第15-19页 |
| ·植物超低温保存技术的基础理论 | 第15-16页 |
| ·超低温保存方法 | 第16-17页 |
| ·低温疗法的原理和优点 | 第17-19页 |
| ·病毒的 RT-PCR 检测技术 | 第19-20页 |
| ·常规 RT-PCR 检测技术 | 第19页 |
| ·一步 RT-PCR 检测技术 | 第19页 |
| ·多重 RT-PCR 检测技术 | 第19-20页 |
| ·植物超低温保存之后遗传稳定性研究 | 第20-22页 |
| ·表观性状的稳定性研究 | 第20-21页 |
| ·基因组 DNA 序列的稳定性研究 | 第21页 |
| ·基因组 DNA 甲基化水平的变化 | 第21-22页 |
| ·基因稳定性研究的技术简介 | 第22-24页 |
| ·AFLP 技术简介 | 第22-23页 |
| ·MSAP 技术简介 | 第23-24页 |
| ·本研究的目的和内容 | 第24-25页 |
| 2.材料和方法 | 第25-35页 |
| ·材料、仪器以及药品 | 第25-26页 |
| ·供试材料 | 第25页 |
| ·仪器设备 | 第25页 |
| ·生化试剂 | 第25-26页 |
| ·超低温实验方法 | 第26-27页 |
| ·组织培养体系的建立 | 第26页 |
| ·超低温保存程序的探索研究 | 第26-27页 |
| ·病毒检测方法 | 第27-29页 |
| ·RNA 的提取 | 第27-28页 |
| ·反转录反应 | 第28页 |
| ·PCR 扩增 | 第28-29页 |
| ·检测方法 | 第29页 |
| ·基因组 DNA 检测 | 第29-35页 |
| ·DNA 提取 | 第29-30页 |
| ·AFLP 分析 | 第30-33页 |
| ·MSAP 分析 | 第33-35页 |
| 3 五叶草莓超低温保存及遗传稳定性结果与分析 | 第35-43页 |
| ·超低温保存结果与分析 | 第35-38页 |
| ·低温锻炼对超低温保存后茎尖成活率的影响 | 第35页 |
| ·固体预培养对超低温保存成活率的影响 | 第35-36页 |
| ·液体处理培养基对超低温保存成活率的影响 | 第36页 |
| ·PVS_2处理对超低温保存成活率的影响 | 第36-37页 |
| ·超低温保存时间对超低温保存成活率的影响 | 第37-38页 |
| ·超低温前后的 AFLP 分析结果 | 第38页 |
| ·超低温前后的 MSAP 分析结果 | 第38-43页 |
| 4 低温疗法脱除草莓病毒实验结果与分析 | 第43-53页 |
| ·低温疗法过程的结果与分析 | 第43-46页 |
| ·低温锻炼对低温疗法过程中茎尖成活率的影响 | 第43页 |
| ·固体预培养对超低温保存成活率的影响 | 第43-44页 |
| ·液体处理培养基对超低温保存成活率的影响 | 第44页 |
| ·PVS_2处理对超低温保存成活率的影响 | 第44-45页 |
| ·超低温保存时间对超低温保存成活率的影响 | 第45-46页 |
| ·病毒检测结果与分析 | 第46-47页 |
| ·RNA 提取结果 | 第46页 |
| ·常规 RT-PCR 检测结果与分析 | 第46-47页 |
| ·低温疗法前后的 AFLP 分析结果 | 第47-48页 |
| ·低温疗法前后的 MSAP 分析结果 | 第48-53页 |
| 5 讨论 | 第53-55页 |
| ·对五叶草莓超低温保存结果的讨论 | 第53页 |
| ·对低温疗法脱除草莓病毒结果的讨论 | 第53页 |
| ·对材料基因序列的结果进行讨论 | 第53-54页 |
| ·对材料基因甲基化变化的讨论 | 第54-55页 |
| 6 结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
