| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 活性氧 | 第12-16页 |
| ·活性氧的来源及调控 | 第12-13页 |
| ·活性氧：从毒性分子到信号分子 | 第13页 |
| ·活性氧对细胞生理的调控 | 第13-14页 |
| ·与活性氧有关的信号通路 | 第14-15页 |
| ·活性氧信号与创伤修复 | 第15-16页 |
| 2 巨噬细胞 | 第16-19页 |
| ·巨噬细胞概述 | 第16-17页 |
| ·巨噬细胞的生物学功能 | 第17-19页 |
| 3 致炎因子和趋化因子 | 第19-24页 |
| 第一章 引言 | 第24-26页 |
| 第二章 材料和方法 | 第26-42页 |
| ·实验材料 | 第26-30页 |
| ·实验细胞 | 第26页 |
| ·主要试剂 | 第26-27页 |
| ·主要仪器设备 | 第27-28页 |
| ·试剂的配置 | 第28-30页 |
| ·RAW264.7 细胞的培养 | 第30-32页 |
| ·细胞培养的准备工作 | 第30-31页 |
| ·实验步骤 | 第31-32页 |
| ·MTT 法确定外源性 H_2O_2促进巨噬细胞增殖的最适生理浓度范围及时间 | 第32-33页 |
| ·基本原理 | 第32页 |
| ·实验步骤 | 第32-33页 |
| ·实验分组及药物处理 | 第33页 |
| ·实验分组 | 第33页 |
| ·药物处理 | 第33页 |
| ·取材 | 第33-34页 |
| ·实时荧光定量（RT-PCR） | 第34-39页 |
| ·总 RNA 提取 | 第34-35页 |
| ·cDNA 第一链合成（逆转录反应） | 第35-36页 |
| ·RT-PCR | 第36-39页 |
| ·ELISA 检测 | 第39-42页 |
| ·基本原理 | 第39页 |
| ·实验设计 | 第39页 |
| ·样品处理 | 第39-40页 |
| ·RAW264.7 细胞上清中 TNF-α、IL-1β、MCP-1、MIP-2 浓度的测定 | 第40-42页 |
| 第三章 结果 | 第42-54页 |
| ·MTT 实验结果 | 第42-43页 |
| ·RNA 质量检测 | 第43-44页 |
| ·cDNA 可用性检测结果 | 第44页 |
| ·RT-PCR 实验结果 | 第44-50页 |
| ·RT-PCR 质量检测结果 | 第44-46页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 细胞因子基因表达的影响 | 第46-48页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 趋化因子基因表达的影响 | 第48-50页 |
| ·ELISA 实验结果 | 第50-54页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 细胞因子蛋白生成的影响 | 第50-52页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 趋化因子蛋白生成的影响 | 第52-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-58页 |
| ·MTT 实验结果分析 | 第54-55页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 细胞因子基因表达与生成的影响 | 第55-56页 |
| ·CAT 对 H_2O_2诱导小鼠巨噬细胞 RAW264.7 趋化因子基因表达与生成的影响 | 第56-58页 |
| 第五章 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第68-69页 |
