| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-27页 |
| ·肝脏的结构与神经分布 | 第11-13页 |
| ·肝脏及其功能 | 第11-12页 |
| ·肝脏的神经分布 | 第12-13页 |
| ·神经对肝脏的调节 | 第13-17页 |
| ·迷走神经的调节作用 | 第13-16页 |
| ·交感神经的调节作用 | 第16-17页 |
| ·肝脏再生机理 | 第17-23页 |
| ·肝脏损伤程度与肝再生的关系 | 第17-18页 |
| ·肝再生能力与肝再生的关系 | 第18页 |
| ·营养支持与肝脏再生的关系 | 第18-20页 |
| ·肝脏再生不同阶段正负调控因子的调节 | 第20-23页 |
| ·大鼠肝再生研究现状 | 第23-26页 |
| ·MMP-2 与肝再生的关系 | 第23-24页 |
| ·血管内皮生长因子与肝再生的关系 | 第24页 |
| ·雌激素受体与肝再生的关系 | 第24-25页 |
| ·细胞色素 P450 与肝再生的关系 | 第25-26页 |
| ·研究的目的和意义 | 第26-27页 |
| 第二章 材料与方法 | 第27-39页 |
| ·材料 | 第27-30页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·主要试剂 | 第27-28页 |
| ·主要试剂配制 | 第28-29页 |
| ·主要手术器械 | 第29页 |
| ·主要仪器 | 第29-30页 |
| ·动物模型制备 | 第30-31页 |
| ·术前准备 | 第30页 |
| ·大鼠 2/3 肝切除组和对照组模型的建立 | 第30页 |
| ·大鼠肝脏完全去神经再生肝模型的建立 | 第30-31页 |
| ·术后管理 | 第31页 |
| ·免疫组化法检测雌激素受体 ERα、ERβ、CYP450 的表达 | 第31-33页 |
| ·动物分组、取材 | 第31页 |
| ·石蜡包埋、制片 | 第31-32页 |
| ·二步法免疫组化检测 ERα的表达 | 第32页 |
| ·二步法免疫组化检测 ERβ的表达 | 第32-33页 |
| ·二步法免疫组化检测 CYP450 的表达 | 第33页 |
| ·实时定量法（RT-PCR）检测大鼠肝脏细胞雌激素受体 ERαmRNA、ERβmRNA CYP450 mRNA 表达 | 第33-37页 |
| ·动物分组与取材 | 第33页 |
| ·总 RNA 提取与纯化 | 第33-34页 |
| ·cDNA 合成与纯化 | 第34页 |
| ·Real-time PCR 引物设计 | 第34-35页 |
| ·实时荧光定量 PCR 反应 | 第35-37页 |
| ·统计学处理 | 第37-39页 |
| 第三章 结果 | 第39-55页 |
| ·动物模型的建立及成功关键因素 | 第39页 |
| ·免疫组织化学法检测大鼠再生肝中 ERα、ERβ、CYP450 的表达 | 第39-41页 |
| ·肝切除和完全去神经再生肝中 ERα的表达 | 第39-40页 |
| ·肝切除和完全去神经再生肝中 ERβ的表达 | 第40-41页 |
| ·肝切除和完全去神经再生肝中 CYP450 的表达 | 第41页 |
| ·RT-PCR 法检测再生肝中 ERαmRNA、ERβmRNA 及 P450 mRNA 的表达 | 第41-55页 |
| ·总 RNA 浓度测定和质量鉴定 | 第41-42页 |
| ·RT-PCR 反应结果 | 第42-43页 |
| ·完全去神经对再生肝细胞中 ERα表达的影响 | 第43-46页 |
| ·完全去神经对再生肝细胞中 ERβ表达的影响 | 第46-49页 |
| ·完全去神经对再生肝细胞中 CYP450 表达的影响 | 第49-55页 |
| 第四章 讨论 | 第55-59页 |
| ·大鼠肝脏完全去神经模型构建方法的选择 | 第55页 |
| ·完全去神经对大鼠再生肝中 ERα表达的影响 | 第55-56页 |
| ·完全去神经对大鼠再生肝中 ERβ表达的影响 | 第56页 |
| ·完全去神经对大鼠再生肝中 CYP450 表达的影响 | 第56-59页 |
| 第五章 结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 附录 | 第71-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文的清单 | 第77-78页 |
