摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
第1章 前言 | 第10-19页 |
·ADH 的国内外研究现状 | 第10-12页 |
·人和动物来源的 ADH | 第10-11页 |
·植物中的 ADH | 第11页 |
·微生物来源的 ADH | 第11-12页 |
·ADH 的提取纯化 | 第12-13页 |
·ADH 应用研究现状 | 第13-16页 |
·制作乙醇生物传感器 | 第14页 |
·ADH 在化学工业中的应用 | 第14-16页 |
·ADH 在医药和食品领域的应用 | 第16页 |
·ADH 的克隆表达 | 第16-17页 |
·选题依据与意义 | 第17-18页 |
·研究方案技术路线 | 第18-19页 |
第2章 菌种筛选及鉴定 | 第19-29页 |
·材料 | 第19-20页 |
·分离样品来源 | 第19页 |
·试剂 | 第19-20页 |
·主要仪器 | 第20页 |
·培养基与缓冲液 | 第20页 |
·实验方法 | 第20-24页 |
·菌株筛选 | 第20-21页 |
·菌株菌落及个体形态特征鉴定 | 第21页 |
·菌株的分子鉴定 | 第21页 |
·菌株生理生化试验 | 第21-24页 |
·实验结果和分析 | 第24-27页 |
·高活性乙醇脱氢酶菌株的筛选 | 第24页 |
·菌株 TDY1 的菌落及个体形态特征 | 第24-25页 |
·菌株 TDY1 16S rDNA 序列的同源性分析 | 第25-26页 |
·菌株 TDY1 的生理生化实验结果 | 第26-27页 |
·讨论 | 第27-29页 |
第3章 菌株 TDY1 产 ADH 培养条件的优化 | 第29-49页 |
·材料 | 第29-30页 |
·试剂 | 第29-30页 |
·主要仪器 | 第30页 |
·实验方法 | 第30-34页 |
·菌株 TDY1 生产曲线的测定 | 第30-31页 |
·乙醇对于菌株 TDY1 生长及酶活的影响 | 第31页 |
·发酵培养基优化 | 第31-33页 |
·培养条件优化 | 第33页 |
·响应面优化菌株 TDY1 生长及产酶试验 | 第33页 |
·验证试验 | 第33-34页 |
·实验结果与分析 | 第34-47页 |
·生长曲线的绘制 | 第34页 |
·乙醇对于菌株 TDY1 生长及酶活的影响 | 第34-35页 |
·不同培养基成分对酶活的影响 | 第35-41页 |
·培养条件的选择 | 第41-43页 |
·响应面优化 | 第43-47页 |
·验证试验 | 第47页 |
·讨论 | 第47-49页 |
第4章 分离纯化及酶学性质研究 | 第49-66页 |
·材料 | 第49-50页 |
·试剂 | 第49页 |
·主要仪器 | 第49-50页 |
·溶液配制 | 第50页 |
·实验方法 | 第50-55页 |
·ADH 提取方法的选择 | 第50-52页 |
·硫酸铵沉淀饱和度的选择 | 第52-53页 |
·ADH 的透析 | 第53页 |
·ADH 的柱层析 | 第53-54页 |
·电泳 | 第54页 |
·ADH 的酶活性质的研究 | 第54-55页 |
·实验结果与分析 | 第55-64页 |
·几种不同细胞破壁方法破壁率的测定 | 第55-56页 |
·乙醇脱氢酶活力的测定 | 第56页 |
·破壁方法的选择 | 第56-57页 |
·超声破碎法条件的优化 | 第57-58页 |
·硫酸铵饱和度的选择 | 第58-59页 |
·柱层析结果 | 第59-60页 |
·SDS-PAGE 结果 | 第60-61页 |
·酶学性质研究 | 第61-64页 |
·讨论 | 第64-66页 |
结论及展望 | 第66-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-74页 |
在学期间发表的学术论文 | 第74页 |