| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-22页 |
| 1 废用性肌萎缩的研究进展 | 第13-17页 |
| ·废用性肌萎缩动物模型的建立 | 第13-14页 |
| ·肌萎缩的评价方法 | 第14页 |
| ·废用状态下骨骼肌形态、结构和功能的变化 | 第14-15页 |
| ·废用状态下骨骼肌钙离子的变化 | 第15-17页 |
| ·废用状态下骨骼肌蛋白表达的变化 | 第17页 |
| 2 冬眠动物抗废用性肌萎缩的研究进展 | 第17-19页 |
| ·冬眠状态下骨骼肌形态、结构和功能的变化 | 第18页 |
| ·冬眠状态下骨骼肌钙离子的变化 | 第18-19页 |
| ·冬眠状态下骨骼肌蛋白质表达的变化 | 第19页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第19-22页 |
| 第二章 后肢去负荷对大鼠比目鱼肌NOS活性、肌纤维内Ca~(2+)浓度的影响以及川芎嗪的对抗作用 | 第22-33页 |
| ·前言 | 第22-23页 |
| ·材料与方法 | 第23-25页 |
| ·实验动物及分组 | 第23页 |
| ·实验动物模型的建立 | 第23页 |
| ·药品制备及给药方式 | 第23-24页 |
| ·主要仪器、试剂和常用溶液的配制 | 第24页 |
| ·NOS活性的测定 | 第24-25页 |
| ·肌纤维内钙离子浓度的测定 | 第25页 |
| ·图像分析及数据统计与处理 | 第25页 |
| ·实验结果 | 第25-30页 |
| ·各组大鼠比目鱼肌肌纤维肌肉体重比和横截面积的变化 | 第25页 |
| ·各组大鼠比目鱼肌肌纤维显微结构的变化 | 第25-26页 |
| ·各组大鼠比目鱼肌NOS的活性 | 第26-27页 |
| ·单根肌纤维的分离与鉴定 | 第27-28页 |
| ·各组大鼠比目鱼肌肌纤维内的钙离子荧光强度 | 第28-30页 |
| ·讨论 | 第30-33页 |
| ·川芎嗪对大鼠比目鱼肌湿重体重比、肌纤维横截面积及肌纤维显微结构的影响 | 第30页 |
| ·后肢去负荷对NOS活性及肌纤维内钙离子浓度的影响 | 第30-31页 |
| ·川芎嗪对NOS活性及肌纤维内钙离子浓度的影响 | 第31-33页 |
| 第三章 后肢去负荷对大鼠比目鱼肌MAFbx mRNA、MuRF1 mRNA表达的影响及川芎嗪的对抗作用 | 第33-45页 |
| ·前言 | 第33-34页 |
| ·材料与方法 | 第34-37页 |
| ·实验动物分组 | 第34页 |
| ·实验动物模型的建立 | 第34页 |
| ·药品制备及给药方式 | 第34页 |
| ·主要仪器、试剂和常用溶液的配制 | 第34-35页 |
| ·实时定量PCR实验方法 | 第35-37页 |
| ·实验结果 | 第37-43页 |
| ·RNA提取的质量和浓度的测定 | 第37-38页 |
| ·实时定量PCR引物的特异性以及退火温度的检测 | 第38页 |
| ·各组大鼠MAFbx/Atrogin-1、MuRF1mRNA表达水平的测定结果 | 第38-39页 |
| ·RT-PCR反应质量鉴定 | 第39-43页 |
| ·讨论 | 第43-45页 |
| ·后肢去负荷对大鼠MAFbx/Atrogin-1、MuRF1mRNA表达水平的影响 | 第43页 |
| ·川芎嗪对大鼠MAFbx/Atrogin-1、MuRF1mRNA表达水平的影响 | 第43-45页 |
| 第四章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌NOS活性、肌纤维内Ca~(2+)浓度的变化 | 第45-52页 |
| ·前言 | 第45-46页 |
| ·材料与方法 | 第46-47页 |
| ·实验动物和分组 | 第46页 |
| ·主要仪器、试剂与常用溶液的配制 | 第46-47页 |
| ·肌肉样品的制备 | 第47页 |
| ·NOS活性的测定 | 第47页 |
| ·肌纤维内钙离子浓度的测定 | 第47页 |
| ·统计学分析 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-50页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌NOS活性的变化 | 第47-48页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌肌纤维内Ca~(2+)浓度的变化 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠NOS活性和Ca~(2+)浓度的变化 | 第50页 |
| ·冬眠黄鼠和后肢去负荷大鼠对NOS活性和Ca~(2+)的浓度影响的比较 | 第50-52页 |
| 第五章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠比目鱼肌MAFbx mRNA、MuRF1 mRNA表达水平的变化 | 第52-60页 |
| ·前言 | 第52页 |
| ·材料与方法 | 第52-53页 |
| ·实验动物和分组 | 第52-53页 |
| ·黄鼠肌肉样品的制备 | 第53页 |
| ·主要仪器、试剂和常用溶液的配制 | 第53页 |
| ·实时定量PCR实验方法 | 第53页 |
| ·结果分析 | 第53页 |
| ·统计学分析 | 第53页 |
| ·实验结果 | 第53-58页 |
| ·RNA提取的质量和浓度的测定 | 第53-54页 |
| ·实时定量PCR引物的特异性以及退火温度的检测 | 第54页 |
| ·冬眠不同时期黄鼠MAFbx/Atrogin-1、MuRF1 mRNA表达水平的测定结果 | 第54页 |
| ·RT-PCR反应质量鉴定 | 第54-58页 |
| ·讨论 | 第58-60页 |
| ·冬眠不同时期达乌尔黄鼠MAFbx/Atrogin-1、MuRF1 mRNA表达水平的变化 | 第58-59页 |
| ·冬眠黄鼠和后肢去负荷大鼠对MAFbx/Atrogin-1、MuRF1 mRNA表达水平的比较 | 第59-60页 |
| 结论与创新点 | 第60-61页 |
| 不足及展望 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-67页 |
| 附录 | 第67-68页 |
| 攻读硕士期间取得的科研成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
