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miR-1/miR-499下调原癌基因ets1表达抑制HepG2细胞侵袭转移及miR-483-3p下调PDGFB抑制HUVEC细胞管状结构形成的研究

提要第1-6页
中文摘要第6-8页
Abstract第8-14页
第一章 前言第14-26页
 一、 miRNA 的生物发生第15-16页
 二、 miRNA 的生物功能第16-17页
 三、 miRNA 与肿瘤第17-19页
 四、 miRNA 与疾病的诊断和治疗第19-20页
 五、 miRNA 体内调控体制的理论认识第20-22页
 六、 miR-1/499、miR-483-3p 与 ets1、PDGFB第22页
 七、 论文设计第22-26页
  1. 论文目的第22-23页
  2. 实验设计第23-26页
第二章 miR-1/miR-499 下调原癌基因 ets1 表达的研究第26-64页
 一、 实验材料第26-31页
  1.细胞系第26页
  2.主要试剂第26-27页
  3.细胞、细菌培养所需溶液第27-28页
  4. SDS-PAGE 电泳和 Western blot 实验用溶液第28-29页
  5. 免疫组化实验所需溶液第29页
  6. 明胶酶谱实验所需溶液第29-30页
  7. 引物第30-31页
 二、 实验方法第31-43页
  1.细胞培养第31页
  2. 基因组 DNA 提取第31页
  3.真核细胞总 RNA 的提取第31-32页
  4.逆转录生成 cDNA第32页
  5.实时定量 PCR 检测 ets1 mRNA 的表达第32-33页
  6.包含 ets13′非翻译区的报告基因载体的构建第33-37页
  7.细胞转染第37-38页
  8.真核细胞内蛋白的裂解及 western-blot 检测第38-39页
  9.双荧光素酶报告基因检测第39页
  10.细胞侵袭转移实验第39-40页
  11. 细胞克隆形成实验第40-41页
  12. 流式仪检测细胞周期第41页
  13. 流式仪检测细胞凋亡第41-42页
  14. 明胶酶谱测定金属基质蛋白酶活性第42页
  15. 免疫组化检测肝癌病理组织中 Ets1 的表达第42-43页
 三、 实验结果第43-57页
  1. miR-1/miR-499 特异性靶向 ets1 的 mRNA 3′UTR第43-47页
  2. miR-1 和 miR-499 影响内源性 ets1 的表达第47-49页
  3. miR-1 和 miR-499 抑制 ets1 对肿瘤细胞功能的影响第49-55页
  4. 受 miR-1 和 miR-499 抑制后 Ets1 下游蛋白的表达第55-56页
  5. 免疫组化检测肝癌病理组织中 Ets1 的表达第56-57页
 四、 讨论第57-61页
 五、 小结第61-64页
第三章 miR-483-3p 下调血小板衍生生长因子 PDGFB 的研究第64-78页
 一、 实验材料第64-66页
  1.细胞系及菌株第64页
  2.主要试剂第64-65页
  3. 引物第65-66页
 二、 实验方法第66-68页
  1.细胞培养第66页
  2.细胞转染第66-67页
  3.真核细胞内蛋白的裂解及 western-blot 检测第67页
  4. Cell Counting Kit-8(CCK8)检测细胞生长第67页
  5.细胞转移实验(Trsnswell Assay)第67-68页
  6. Endothelial Tube Formation Assay 体外检测血管生成第68页
 三、 实验结果第68-75页
  1. miR-483-3p 负调控 PDGFB 的表达第68-70页
  2. miR-483-3p 负调控 PDGFB 对血管生成的影响第70-73页
  3. miR-483-3p 负调控 PDGFB 对 Akt 信号通路的影响第73-75页
 四、 讨论第75-77页
 五、 小结第77-78页
结论第78-80页
参考文献第80-84页
主要仪器与设备第84-86页
个人简历第86-88页
后记和致谢第88页

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