摘要 | 第1-3页 |
ABSTRACT | 第3-11页 |
1 绪论 | 第11-30页 |
·中药化学成分提取分离方法与技术 | 第11-21页 |
·中药传统溶剂提取方法 | 第11-12页 |
·中药新型的分离提取技术 | 第12-21页 |
·肝癌药物治疗及其新药筛选 | 第21-23页 |
·高通量药物筛选技术 | 第23-28页 |
·药物筛选模型 | 第23-24页 |
·肿瘤与细胞凋亡的关系 | 第24-25页 |
·中医药诱导肿瘤细胞凋亡的研究现状 | 第25-27页 |
·高通量药物筛选库 | 第27-28页 |
·课题的研究目的及意义 | 第28页 |
·课题研究的主要技术路线 | 第28-29页 |
·主要创新点 | 第29-30页 |
2 中药提取库的建立 | 第30-34页 |
·实验材料 | 第30页 |
·主要仪器 | 第30页 |
·主要试剂 | 第30页 |
·中药的选择 | 第30页 |
·实验方法 | 第30-32页 |
·实验结果与分析 | 第32-34页 |
3 抗肝癌中药成分的高通量筛选 | 第34-45页 |
·实验材料 | 第35-36页 |
·主要仪器 | 第35页 |
·细胞株 | 第35页 |
·主要试剂配制 | 第35-36页 |
·实验方法 | 第36-37页 |
·人肝癌细胞株 HepG2 复苏 | 第36页 |
·人肝癌细胞株 HepG2 传代培养 | 第36页 |
·HepG2 细胞生长曲线测定(MTT 实验方法) | 第36页 |
·细胞活性检测(MTT 实验方法){初筛} | 第36-37页 |
·结果与分析 | 第37-45页 |
·HepG2 细胞生长曲线 | 第37-38页 |
·抑制HepG2 细胞增殖的药物高通量筛选 | 第38-40页 |
·MTT 法测定样品LCID-1 对HepG2 细胞活性的影响 | 第40-43页 |
·LCID-1 作用小白鼠原代肝细胞后细胞活力的检测 | 第43-45页 |
4 中药提取分离物LCID-1 作用HEPG2 后的形态学检测 | 第45-50页 |
·实验材料 | 第45-46页 |
·主要仪器 | 第45页 |
·主要试剂配制 | 第45-46页 |
·实验方法 | 第46页 |
·HepG2 细胞培养方法 | 第46页 |
·普通倒置相差显微镜观察细胞形态 | 第46页 |
·透射电镜观察细胞形态 | 第46页 |
·实验结果与分析 | 第46-50页 |
·普通倒置相差显微镜观察细胞形态 | 第46-48页 |
·透射电镜观察细胞形态 | 第48-50页 |
5 中药提取分离物LCID-1作用HEPG2 细胞株后流式细胞仪检测 | 第50-56页 |
·实验材料 | 第51页 |
·主要仪器 | 第51页 |
·主要试剂 | 第51页 |
·实验方法 | 第51-52页 |
·HepG2 细胞培养方法 | 第51页 |
·中药提取分离物LCID-1 作用 HepG2 细胞株后流式细胞仪检测 | 第51-52页 |
·实验结果与分析 | 第52-56页 |
6 TUNEL染色检测中药提取分离物LCID-1作用HEPG2后的细胞凋亡 | 第56-58页 |
·实验材料 | 第56页 |
·实验试剂 | 第56页 |
·主要试剂配制 | 第56页 |
·实验方法 | 第56-57页 |
·HepG2 细胞培养 | 第56页 |
·TUNEL 染色检测中药提取分离物LCID-1作用 HepG2 后的细胞凋亡 | 第56-57页 |
·实验结果与分析 | 第57-58页 |
7 RT-PCR 检测LCID-1 作用HEPG2 细胞后MRNA 转录 | 第58-62页 |
·实验材料 | 第58页 |
·主要仪器 | 第58页 |
·主要试剂 | 第58页 |
·实验方法 | 第58-60页 |
·HepG2 细胞培养 | 第58-59页 |
·RT-PCR 检测LCID-1 作用HepG2 细胞后m RNA 转录 | 第59-60页 |
·实验结果与分析 | 第60-62页 |
8 细胞免疫化学染色检测BCL-2、KI-67 表达 | 第62-66页 |
·实验材料 | 第62页 |
·主要仪器 | 第62页 |
·主要试剂 | 第62页 |
·实验方法 | 第62-63页 |
·HepG2 细胞培养 | 第62-63页 |
·细胞免疫化学染色检测bcl-2、Ki-67 表达 | 第63页 |
·实验结果与分析 | 第63-66页 |
9 结论与展望 | 第66-68页 |
·总结 | 第66页 |
·展望 | 第66-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-73页 |