海带多糖的分离纯化及活性研究
摘要 | 第1-14页 |
Abstract | 第14-16页 |
缩略词表 | 第16-17页 |
前言 | 第17-29页 |
·海带硫酸多糖结构及其生物学功能概述 | 第17-24页 |
·清除自由基和抗氧化作用 | 第18-19页 |
·抗肿瘤作用 | 第19-20页 |
·抗高血脂作用 | 第20-22页 |
·对脂酶活性的影响 | 第21页 |
·对脂质代谢的影响 | 第21-22页 |
·调节免疫力 | 第22-23页 |
·细胞和细胞因子的调节 | 第22页 |
·对补体系统的作用 | 第22-23页 |
·抗血栓作用及其可能机制 | 第23-24页 |
·海带多糖的提取 | 第24-27页 |
·水提法 | 第24页 |
·碱处理法 | 第24页 |
·分类提取法 | 第24-25页 |
·超声法 | 第25-26页 |
·超声波介绍 | 第25页 |
·超声提取 | 第25-26页 |
·超声波提取海带多糖 | 第26页 |
·酶解法 | 第26-27页 |
·褐藻糖胶的纯化 | 第27-29页 |
·乙醇分级法 | 第27-28页 |
·色谱法 | 第28-29页 |
第二部分 海带硫酸多糖的提取 | 第29-41页 |
·材料与仪器 | 第29页 |
·材料 | 第29页 |
·仪器 | 第29页 |
·实验方法 | 第29-33页 |
·制备海带粉 | 第29页 |
·热水法提取 | 第29-30页 |
·酶提取法 | 第30页 |
·碱提取法 | 第30-31页 |
·超声波提取法单因素考察 | 第31-32页 |
·作用时间对海带多糖提取率的影响 | 第31-32页 |
·固液比对海带多糖提取率的影响 | 第32页 |
·pH对海带多糖提取率的影响 | 第32页 |
·温度对海带多糖提取率的影响 | 第32页 |
·频率对海带多糖提取率的影响 | 第32页 |
·各因素对海带多糖提取率的影响 | 第32-33页 |
·结果与分析 | 第33-41页 |
·传统方法提取多糖 | 第33-34页 |
·单因素试验结果 | 第34-38页 |
·作用时间对海带多糖提取率的影响 | 第34-35页 |
·固液比对海带多糖提取率的影响 | 第35页 |
·pH对海带多糖提取率的影响 | 第35-36页 |
·温度对海带多糖提取率的影响 | 第36-37页 |
·频率对海带多糖提取率的影响 | 第37-38页 |
·超声波提取条件的确定 | 第38页 |
·正交试验获得的多糖 | 第38-41页 |
第三部分 海带多糖理化性质分析 | 第41-60页 |
·材料与仪器 | 第41页 |
·材料 | 第41页 |
·仪器 | 第41页 |
·实验方法 | 第41-45页 |
·糖含量的测定 | 第41-42页 |
·硫酸根含量的测定 | 第42页 |
·糖醛酸含量的测定 | 第42-43页 |
·多糖粘度的测定 | 第43页 |
·超滤法划分分子量 | 第43页 |
·最佳方法提取海带多糖 | 第43页 |
·多糖对自由基的清除 | 第43页 |
·气相色谱分析单糖含量 | 第43-44页 |
·高效液相色谱法 | 第44-45页 |
·多糖的分离纯化 | 第45页 |
·结果分析 | 第45-60页 |
·糖含量的测定 | 第45-47页 |
·硫酸根含量的测定 | 第47-48页 |
·糖醛酸含量的测定 | 第48-50页 |
·粘度测定结果 | 第50页 |
·超虑法进行分子量分级 | 第50-51页 |
·最佳提取条件 | 第51-54页 |
·羟自由基清除结果 | 第54-55页 |
·液相分析分子量分布 | 第55-57页 |
·海带多糖的分离 | 第57-58页 |
·气相色谱分析 | 第58-60页 |
第四部分 生物活性研究 | 第60-65页 |
·材料 | 第60-62页 |
·器材 | 第60页 |
·材料 | 第60页 |
·试剂 | 第60-62页 |
·PBS的配制 | 第60-61页 |
·细胞培养液 | 第61页 |
·0.25%胰酶消化液(50mL) | 第61页 |
·MTT液(5mg/mL) | 第61页 |
·小牛血清应用液 | 第61-62页 |
·方法 | 第62-63页 |
·细胞传代 | 第62页 |
·细胞培养液的更换 | 第62页 |
·MTT比色法测定细胞相对存活率 | 第62-63页 |
·多糖溶液的配制 | 第62页 |
·实验步骤 | 第62-63页 |
·数据分析 | 第63-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
已撰写待发表论文 | 第72-73页 |
学位论文评阅及答辩情况表 | 第73页 |