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脂肪酶的生产及其在布洛芬手性拆分中的应用基础研究

中文摘要第1-9页
英文摘要第9-11页
第一章 文献综述第11-34页
   ·微生物脂肪酶的生产第11-20页
     ·脂肪酶产生菌的筛选第11-12页
     ·脂肪酶的生产第12-14页
     ·脂肪酶的纯化及其酶学性质第14-19页
     ·脂肪酶的固定化研究第19-20页
   ·微生物脂肪酶催化拆分布洛芬的研究进展第20-32页
     ·拆分方法的研究概况第20-22页
     ·酶法拆分的研究进展第22-27页
     ·酶法拆分布洛芬的研究进展第27-32页
   ·本文的研究思路与主要内容第32-34页
第二章 高立体选择性的脂肪酶产生菌的筛选第34-46页
   ·材料与方法第35-38页
     ·菌种第35页
     ·培养基第35-36页
     ·染色液第36-37页
     ·种子培养第37页
     ·摇瓶产酶第37页
     ·脂肪酶活力的测定——分光光度计法第37页
     ·立体选择性脂肪酶产生菌的筛选第37-38页
   ·结果与讨论第38-44页
     ·高效液相色谱检测方法的建立第38-39页
     ·立体选择性脂肪酶产生菌的定量筛选第39-41页
       ·脂肪酶产生菌产酶能力的定性筛选第39-40页
       ·立体选择性脂肪酶产生菌的定量筛选第40-41页
     ·筛选得到的产酶菌株的菌落、菌体形态及生理生化特征第41-44页
   ·小结第44-46页
第三章 Bacillus coagulans脂肪酶产酶条件的优化第46-57页
   ·材料与方法第47页
     ·菌种第47页
     ·主要原料和试剂第47页
     ·培养基第47页
     ·发酵产酶试验第47页
     ·酶活测定方法第47页
   ·结果与讨论第47-55页
     ·脂肪酶发酵条件的优化第47-51页
       ·培养温度对产酶的影响第47-48页
       ·转速对产酶的影响第48-49页
       ·摇瓶装量对产酶的影响第49页
       ·接种量对产酶的影响第49-50页
       ·发酵周期对产酶的影响第50-51页
     ·脂肪酶产酶培养基的优化第51-55页
       ·碳源对产酶的影响第51页
       ·氮源对产酶的影响第51-52页
       ·不同磷酸盐对产酶的影响第52-53页
       ·利用均匀设计法优化产酶培养基第53-55页
         ·利用均匀设计法筛选产酶最佳培养基第53-54页
         ·试验数据的回归分析及回归方程的建立第54页
         ·优化结果的验证第54-55页
   ·小结第55-57页
第四章 Bacillus coagulans脂肪酶的纯化及酶学性质第57-71页
   ·材料与方法第58-60页
     ·主要试剂第58页
     ·酶液的制备第58页
     ·脂肪酶的纯化第58-59页
     ·脂肪酶蛋白质浓度的测定第59页
     ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS—PAGE)第59页
     ·脂肪酶酶学性质的研究第59-60页
   ·结果与讨论第60-70页
     ·CM-Sepbarose FF层析第60-61页
     ·Sephacryl S200柱层析第61-62页
     ·Bacillus coagulans ZJU318脂肪酶的纯化过程小结第62-63页
     ·脂肪酶分子量的测定第63-65页
     ·Bacillus coagulans ZJU318所产脂肪酶的酶学特性第65-70页
       ·脂肪酶作用的最适温度第65页
       ·脂肪酶的温度稳定性第65-66页
       ·脂肪酶作用的最适pH第66-67页
       ·脂肪酶的pH稳定性第67-68页
       ·金属离子及EDTA对脂肪酶活力的影响第68-69页
       ·表面活性剂对脂肪酶活力的影响第69-70页
   ·小结第70-71页
第五章 Penillium expansum产酶条件的优化第71-79页
   ·材料与方法第72-73页
     ·材料第72页
     ·方法第72-73页
   ·结果与讨论第73-78页
     ·发酵产酶培养基的优化第73-75页
       ·碳源对产酶的影响第73-74页
       ·氮源对产酶的影响第74-75页
       ·初始pH对产酶的影响第75页
     ·产酶培养基优化的均匀设计实验第75-77页
     ·验证实验第77-78页
   ·小结第78-79页
第六章 Penicillium expansum脂肪酶的纯化及酶学性质第79-90页
   ·材料与方法第80-82页
     ·菌种第80页
     ·主要试剂第80页
     ·培养基第80页
     ·方法第80-82页
       ·产酶条件与方法第80-81页
       ·脂肪酶活力测定方法——分光光度计法第81页
       ·脂肪酶的纯化第81页
       ·蛋白质浓度的测定第81页
       ·SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳第81-82页
       ·脂肪酶酶学性质的研究第82页
   ·结果与讨论第82-88页
     ·DEAE-Sepharose FF柱层析第82-83页
     ·Sephacry1 S200柱层析第83页
     ·脂肪酶纯化过程的小结第83-85页
     ·脂肪酶分子量的测定第85-86页
     ·Penicillium expansum TS414所产脂肪酶的酶学性质第86-88页
       ·脂肪酶作用的最适温度第86页
       ·脂肪酶的温度稳定性第86-87页
       ·脂肪酶作用的最适pH第87页
       ·脂肪酶的pH稳定性第87-88页
   ·小结第88-90页
第七章 游离脂肪酶催化拆分布洛芬对映体的研究第90-102页
   ·材料与方法第91-92页
     ·材料第91页
     ·方法第91-92页
       ·脂肪酶催化拆分反应第91页
       ·反应转化率(C)、对映体过量值(ee)及对映体选择率(E)测定第91-92页
   ·结果与讨论第92-101页
     ·布洛芬拆分适用的脂肪酶的确定第92-94页
     ·pH对拆分反应的影响第94页
     ·体系含水量对拆分反应的影响第94-96页
     ·温度对拆分反应的影响第96-97页
     ·底物醇的种类(酰基受体)对拆分反应的影响第97-98页
     ·1-丙醇的量对脂肪酶活力及对映体选择性的影响第98-99页
     ·脂肪酶的用量对酶促拆分反应的影响第99-100页
     ·有机溶剂对酶促拆分反应的影响第100-101页
   ·小结第101-102页
第八章 固定化脂肪酶催化拆分布洛芬对映体的研究第102-115页
   ·材料与方法第102-104页
     ·材料第102-103页
     ·PEL的提取第103页
     ·固定化脂肪酶的制备第103页
     ·固定化酶催化拆分(R,S)-布洛芬:第103页
     ·固定化酶的活力及对映体选择性的测定第103-104页
   ·结果与讨论第104-113页
     ·不同载体固定化PEL在非水相中催化性能的比较第104-105页
     ·影响非水相中固定化PEL催化性能的因素第105-109页
       ·酶量与树脂的比例对固定化脂肪酶活力及对映体选择性的影响第105-106页
       ·pH对脂肪酶活力及对映体选择性的影响第106页
       ·体系含水量对脂肪酶活力及对映体选择性的影响第106-108页
       ·转速对固定化酶活力及对映体选择性的影响第108-109页
     ·大孔吸附树脂固定化对PEL在非水相中的酶学性质的影响第109-111页
       ·固定化对PEL最适反应温度的影响第109页
       ·固定化对PEL热稳定性的影响第109-110页
       ·固定化对PEL在非水体系中分散性的影响第110-111页
       ·固定化对PEL拆分布洛芬的活力和选择性的影响第111页
     ·固定化酶促拆分反应进程曲线第111-112页
     ·大孔吸附树脂固定化PEL重复分批拆分(R,S)-布洛芬第112-113页
   ·小结第113-115页
第九章 固定化脂肪酶拆分布洛芬的酶反应器及反应动力学的研究第115-127页
   ·材料与方法第116页
     ·材料第116页
     ·BSTR中大孔吸附树脂AB—8固定化PEL对(R,S)-布洛芬的拆分第116页
     ·大孔吸附树脂AB—8固定化PEL拆分(R,S)-布洛芬的反应动力学研究第116页
   ·结果与讨论第116-126页
     ·BSTR中大孔吸附树脂AB—8固定化PEL拆分(R,S)-布洛芬的工艺参数的优化第116-118页
     ·验证实验第118-119页
     ·BSTR中固定化酶操作稳定性的研究第119-120页
     ·固定化酶反应动力学的研究第120-126页
   ·小结第126-127页
第十章 结论与建议第127-132页
   ·结论第127-131页
   ·建议第131-132页
参考文献第132-149页
附录第149-150页
致谢第150页

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