摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-13页 |
文献综述 | 第13-56页 |
第一章 哺乳动物雄性生殖干细胞的来源 | 第13-19页 |
·哺乳动物生殖细胞分化图谱 | 第13-14页 |
·PGCs 的基本特性及其雄性化机理 | 第14-15页 |
·哺乳动物雄性化机理 | 第15-19页 |
·哺乳动物雄性化器官发生机理(图1-3) | 第15-16页 |
·哺乳动物PGCs 雄性化机理 | 第16-19页 |
第二章 哺乳动物雄性生殖干细胞的生物学特征 | 第19-29页 |
·mGSC 的生物学特性 | 第19-25页 |
·mGSCs 数量 | 第19-20页 |
·精原干细胞的自我更新和分化特性 | 第20-24页 |
·mGSCs 微环境 | 第24页 |
·mGSC 不确定的细胞周期 | 第24-25页 |
·mGSCs 的迁移能力 | 第25页 |
·雄性生殖干细胞体内富集 | 第25-26页 |
·mGSC 形态学和分子标志及免疫学特性 | 第26-29页 |
·mGSC 的形态学 | 第26-27页 |
·mGSC 的分子标志 | 第27-29页 |
第三章 哺乳动物雄性生殖干细胞的分离纯化 | 第29-34页 |
·哺乳动物睾丸的形态结构特性 | 第29页 |
·雄性生殖干细胞的制备 | 第29-34页 |
·睾丸组织细胞的解离 | 第29-31页 |
·mGSCs 的分离纯化 | 第31-34页 |
第四章 哺乳动物雄性生殖干细胞体外培养的影响因素 | 第34-44页 |
·培养基及血清 | 第35-36页 |
·基础培养液的确定 | 第35页 |
·血清 | 第35-36页 |
·其他细胞的作用 | 第36-37页 |
·饲养层细胞的利用 | 第36页 |
·支持细胞(sertoli cells, SCs) 的作用 | 第36-37页 |
·细胞因子 | 第37-41页 |
·干细胞因子(stem cell factor, SCF) | 第37-39页 |
·白血病抑制因子(LIF) | 第39-40页 |
·胶质细胞源神经营养因子(glial cell line-derived neurotrophic factor ,GDNF) | 第40-41页 |
·表皮生长因子(epidermal growth factor,EGF) | 第41页 |
·添加剂、激素和维生素的应用 | 第41-43页 |
·添加剂 | 第41页 |
·激素及维生素 | 第41-43页 |
·培养温度的确定 | 第43-44页 |
第五章 哺乳动物生殖细胞减数分裂及移植研究进展 | 第44-56页 |
·雄性生殖细胞体外减数分裂研究进展 | 第44-52页 |
·体外睾丸细胞株的建立 | 第44-45页 |
·曲细精管培养法 | 第45-47页 |
·胚胎干细胞减数分裂研究 | 第47-48页 |
·精原干细胞的减数分裂研究 | 第48-52页 |
·体内移植m GSCs 诱导精子发生过程恢复研究进展 | 第52-56页 |
·mGSC 同种间移植 | 第52页 |
·mGSC 异种间移植 | 第52-54页 |
·mGSCs 移植的方法 | 第54-56页 |
试验研究 | 第56-120页 |
前言 | 第56-57页 |
第六章 牛生殖细胞的生长发育及新生牛MGSC 的分离纯化 | 第57-74页 |
·材料与方法 | 第57-62页 |
·材料 | 第57-58页 |
·方法 | 第58-62页 |
·结果与分析 | 第62-67页 |
·不同发育阶段牛睾丸组织结构比较 | 第62-63页 |
·不同消化方式处理新生牛睾丸曲细精管细胞分散程度 | 第63-64页 |
·新生牛mGSCs 贴壁速率差法分离纯化效果 | 第64-65页 |
·新生牛mGSCs Percoll 法分离纯化效果 | 第65-66页 |
·新生牛mGSCs 形态特征 | 第66-67页 |
·讨论 | 第67-69页 |
·睾丸组织的细胞类型和酶消化法的最佳方案 | 第67页 |
·纯化新生牛mGSCs 不同方法 | 第67-68页 |
·分离纯化的新生牛mGSCs 形态特征 | 第68-69页 |
·小结 | 第69-74页 |
第七章 新生牛MGSCS 的体外培养行为 | 第74-100页 |
·材料方法 | 第74-79页 |
·材料 | 第74页 |
·方法 | 第74-79页 |
·结果 | 第79-87页 |
·MEF 和BSCs 饲养层细胞增殖和存活规律 | 第79-81页 |
·mGSCs 生长规律 | 第81-87页 |
·讨论 | 第87-89页 |
·支持细胞(SCs)体外培养 | 第87页 |
·培养系统对新生牛mGSCs 生长增殖分化的影响 | 第87-88页 |
·无饲养层系统中mGSCs 的生长行为 | 第88-89页 |
·新生牛mGSCs 两类集落的形成及特性 | 第89页 |
·小结 | 第89-100页 |
第八章 体外诱导新生牛MGSCS 向单倍体细胞分化 | 第100-112页 |
·材料与方法 | 第100-102页 |
·材料 | 第100-101页 |
·方法 | 第101-102页 |
·结果 | 第102-104页 |
·不同RA 浓度诱导新生牛mGSCs 形成精子样细胞的效率 | 第102页 |
·RA 诱导新生牛mGSCs 形成精子样细胞 | 第102-103页 |
·RA 和OA 联合诱导新生牛mGSCs 的效果 | 第103页 |
·诱导产生的精子样细胞的形态 | 第103-104页 |
·流式细胞仪分拣精子样细胞 | 第104页 |
·牛卵母细胞ICSI 试验 | 第104页 |
·讨论 | 第104-106页 |
·生殖细胞体外减数分裂的实现 | 第104-105页 |
·体外诱导形成精子样细胞的检测 | 第105-106页 |
·小结 | 第106-112页 |
第九章 无内源性生殖细胞模型兔制作与新生牛MGSCS 的移植 | 第112-120页 |
·材料与方法 | 第112-113页 |
·材料 | 第112页 |
·方法 | 第112-113页 |
·结果 | 第113-115页 |
·无内源性生殖细胞模型兔构建 | 第113-115页 |
·新生牛mGSCs 向模型兔睾丸体内移植及观察 | 第115页 |
·讨论 | 第115-117页 |
·皮下注射白消安对受体兔的影响 | 第115-116页 |
·mGSCs 异体移植后的免疫排斥分析 | 第116页 |
·mGSCs 移植方法与效果 | 第116-117页 |
·小结 | 第117-120页 |
结论 | 第120-122页 |
本研究的创新点 | 第122页 |
进一步研究的内容 | 第122-123页 |
参考文献 | 第123-139页 |
致谢 | 第139-140页 |
作者简介 | 第140页 |