| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-36页 |
| ·引言 | 第14-15页 |
| ·分离模式 | 第15-18页 |
| ·实验技术 | 第18-21页 |
| ·检测技术 | 第18-19页 |
| ·进样技术 | 第19-20页 |
| ·多通道毛细管技术和微芯片技术 | 第20-21页 |
| ·毛细管电泳分离检测疾病特征性物质和手性药物的研究进展 | 第21-28页 |
| ·氨基酸类神经递质 | 第21-23页 |
| ·肽和蛋白质 | 第23-24页 |
| ·药物 | 第24-26页 |
| ·毛细管电泳研究药物与蛋白质的相互作用 | 第26-28页 |
| ·本论文的选题思想和主要内容 | 第28-31页 |
| 参考文献 | 第31-36页 |
| 第二章 毛细管电泳-激光诱导荧光分离检测脑缺血引起大鼠脑皮质中氨基酸神经递质含量变化及药物黄芩甙对其影响研究 | 第36-49页 |
| ·引言 | 第36-37页 |
| ·实验部分 | 第37-39页 |
| ·试剂 | 第37页 |
| ·实验动物及药理实验 | 第37-38页 |
| ·毛细管电泳仪器及操作参数 | 第38页 |
| ·柱前衍生 | 第38-39页 |
| ·数据的统计分析 | 第39页 |
| ·结果及讨论 | 第39-47页 |
| ·衍生反应条件的优化 | 第39-41页 |
| ·CE分离条件的选择及优化 | 第41-43页 |
| ·CE-LIF分析体系的特性评价 | 第43-44页 |
| ·三组大白鼠脑皮质匀浆液中氨基酸神经递质的测定 | 第44-46页 |
| ·黄芩甙对脑缺血的大白鼠脑皮质中氨基酸神经递质含量的影响 | 第46-47页 |
| ·结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-49页 |
| 第三章 毛细管电泳免疫分析法分离检测血清中异源移植性感染因子daintain／AIF1 | 第49-64页 |
| ·引言 | 第49-51页 |
| ·实验部分 | 第51-52页 |
| ·试剂和材料 | 第51页 |
| ·实验步骤 | 第51-52页 |
| ·毛细管电泳仪器及操作参数 | 第52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-62页 |
| ·毛细管电泳免疫分析形式的选择 | 第52-53页 |
| ·FITC标记daintain | 第53-54页 |
| ·高效液相色谱(HPLC)纯化FITC-daintain | 第54-55页 |
| ·毛细管电泳分离条件的选择 | 第55-57页 |
| ·免疫结合条件的选择和优化 | 第57-59页 |
| ·daintain的毛细管电泳竞争性免疫分析 | 第59-61页 |
| ·毛细管电泳免疫分析体系的特性评价 | 第61页 |
| ·白血病患儿血清中daintain的检测 | 第61-62页 |
| ·结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-64页 |
| 第四章 毛细管电泳分离氟西汀、卡替诺尔、苯海索和美多心安手性药物对映体 | 第64-76页 |
| ·引言 | 第64-66页 |
| ·实验部分 | 第66-67页 |
| ·试剂 | 第66页 |
| ·仪器及操作参数 | 第66-67页 |
| ·结果与讨论 | 第67-74页 |
| ·手性选择剂种类的选择 | 第67-68页 |
| ·手性选择剂的浓度对手性分离度Rs的影响 | 第68-69页 |
| ·背景电解质pH值对手性分离度Rs的影响 | 第69-70页 |
| ·CE分离电压和分离温度对手性分离度的影响 | 第70-71页 |
| ·四种药物对映体在最佳手性分离条件下的CE分离 | 第71-74页 |
| ·线性回归方程、检测限和回收率 | 第74页 |
| ·结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-76页 |
| 第五章 电动场放大进样／毛细管电泳分离检测血清中手性药物 | 第76-88页 |
| ·引言 | 第76-77页 |
| ·实验部分 | 第77页 |
| ·试剂 | 第77页 |
| ·仪器及操作参数 | 第77页 |
| ·血清样品处理 | 第77页 |
| ·结果与讨论 | 第77-84页 |
| ·予进样水塞进样时间的选择 | 第77-80页 |
| ·样品溶液组成的选择和优化 | 第80-82页 |
| ·电动场放大进样时间和电压对富集因子和分离度的影响 | 第82-83页 |
| ·四种对映体的最佳电动场放大进样条件，场放大富集因子和检测限 | 第83-84页 |
| ·血清中氟西汀和卡替诺尔对映体的分离检测 | 第84-86页 |
| ·结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-88页 |
| 第六章 毛细管电泳-激光诱导荧光法分离检测血清中氟西汀对映体 | 第88-102页 |
| ·引言 | 第88-90页 |
| ·实验部分 | 第90页 |
| ·试剂及样本 | 第90页 |
| ·仪器及操作参数 | 第90页 |
| ·血清样品处理 | 第90页 |
| ·实验结果与讨论 | 第90-98页 |
| ·NBD-F衍生氟西汀对映体 | 第90-94页 |
| ·NBD-F-氟西汀对映体的CE-LIF手性分离 | 第94-97页 |
| ·CE-LIF分析体系的特性评价 | 第97-98页 |
| ·抗抑郁治疗的病人血清中氟西汀对映体的分离测定 | 第98-99页 |
| ·结论 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-102页 |
| 第七章 毛细管电泳／前沿分析法研究人血清白蛋白与氟西汀和卡替诺尔的相互作用 | 第102-115页 |
| ·引言 | 第102-104页 |
| ·实验部分 | 第104-106页 |
| ·试剂 | 第104页 |
| ·仪器及操作参数 | 第104页 |
| ·药物校正曲线的测定 | 第104页 |
| ·游离药物浓度的测定 | 第104-105页 |
| ·亲和毛细管电泳实验测定HSA和药物-HSA复合物的电泳淌度 | 第105页 |
| ·数据处理 | 第105-106页 |
| ·结果与讨论 | 第106-113页 |
| ·毛细管电泳／前沿分析操作条件的选择 | 第106-107页 |
| ·亲和毛细管电泳实验 | 第107-108页 |
| ·毛细管的清洗步骤与CE／FA分析法的重现性 | 第108-109页 |
| ·氟西汀与HSA的相互作用 | 第109-112页 |
| ·卡替诺尔与HSA的结合常数和结合计量数的测定 | 第112-113页 |
| ·结论 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-115页 |
| 附录 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
