中文摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
第一章 前言 | 第13-17页 |
·药物代谢研究 | 第13-14页 |
·体内研究方法 | 第13-14页 |
·体外研究方法 | 第14页 |
·哺乳动物药物代谢微生物模型的优势 | 第14-15页 |
·利用微生物模型研究药物的二相代谢意义及研究现状 | 第15-16页 |
·研究目标 | 第16-17页 |
第二章 实验材料与基本方法 | 第17-20页 |
·微生物 | 第17页 |
·培养基 | 第17页 |
·药品与试剂 | 第17-18页 |
·仪器设备 | 第18页 |
·微生物转化系统 | 第18-19页 |
·转化菌株孢子和种子的制备 | 第18页 |
·基本转化体系 | 第18-19页 |
·样品预处理和代谢产物检测 | 第19-20页 |
第三章 利用微生物模型研究柳胺酚及乙氧苯柳胺的二相代谢 | 第20-30页 |
·柳胺酚及乙氧苯柳胺 | 第20-21页 |
·建立转化柳胺酚及乙氧苯柳胺的微生物模型 | 第21-28页 |
·实验方法 | 第21页 |
·柳胺酚及乙氧苯柳胺转化产物的检测 | 第21页 |
·乙氧苯柳胺葡萄糖结合物的酶解 | 第21页 |
·柳胺酚及乙氧苯柳胺转化菌株的筛选 | 第21页 |
·实验结果 | 第21-28页 |
·柳胺酚及乙氧苯柳胺转化产物的检测 | 第21-25页 |
·柳胺酚转化产物的检测 | 第22-24页 |
·乙氧苯柳胺转化产物的检测 | 第24-25页 |
·乙氧苯柳胺葡萄糖结合物的酶解 | 第25-26页 |
·柳胺酚及乙氧苯柳胺转化菌株的筛选 | 第26-28页 |
·柳胺酚转化菌株的筛选 | 第26-27页 |
·乙氧苯柳胺转化菌株的筛选 | 第27-28页 |
·讨论 | 第28-30页 |
第四章 泮妥拉唑在小克银汉霉模型中的代谢研究 | 第30-48页 |
·泮妥拉唑 | 第30-32页 |
·建立转化泮妥拉唑的微生物模型 | 第32-46页 |
·实验方法 | 第32-35页 |
·泮妥拉唑转化产物的检测 | 第32-33页 |
·泮妥拉唑硫醚转化菌株的筛选 | 第33-34页 |
·泮妥拉唑硫醚转化条件关键参数的调整 | 第34页 |
·转化产物的制备与结构鉴定 | 第34-35页 |
·泮妥拉唑硫醚转化产物M1的制备与结构鉴定 | 第34页 |
·泮妥拉唑硫醚转化产物M2的制备与结构鉴定 | 第34-35页 |
·实验结果 | 第35-46页 |
·泮妥拉唑转化产物的检测 | 第35-38页 |
·泮妥拉唑硫醚转化菌株的筛选 | 第38-39页 |
·泮妥拉唑硫醚转化条件关键参数的调整 | 第39页 |
·转化产物的制备与结构鉴定 | 第39-46页 |
·讨论 | 第46-48页 |
第五章 氯诺昔康在小克银汉霉模型中的代谢及相关药物代谢酶的初步研究 | 第48-62页 |
·氯诺昔康 | 第48-49页 |
·建立转化氯诺昔康的微生物模型 | 第49-58页 |
·实验方法 | 第49-50页 |
·氯诺昔康转化产物的检测 | 第49页 |
·氯诺昔康转化菌株的筛选 | 第49页 |
·氯诺昔康的转化条件优化 | 第49-50页 |
·转化产物的定性分析 | 第50页 |
·实验结果 | 第50-58页 |
·氯诺昔康转化产物的检测 | 第50-53页 |
·氯诺昔康转化菌株的筛选 | 第53页 |
·氯诺昔康的转化条件优化 | 第53-56页 |
·培养基初始pH值的影响 | 第53-54页 |
·转化时间的影响 | 第54-55页 |
·培养基成分的影响 | 第55-56页 |
·转化产物的定性分析 | 第56-58页 |
·相关药物代谢轻化酶的初步确定 | 第58-60页 |
·实验方法 | 第58页 |
·磺胺苯吡唑最低抑制浓度的确定 | 第58页 |
·雅致小克银汉霉AS3.2028对甲苯磺丁脲的转化 | 第58页 |
·磺胺苯吡唑和甲苯磺丁脲对氯诺昔康转化的影响 | 第58页 |
·实验结果 | 第58-60页 |
·磺胺苯吡唑最低抑制浓度的确定 | 第58-59页 |
·雅致小克银汉霉AS3.2028对甲苯磺丁脲的转化 | 第59页 |
·磺胺苯吡唑和甲苯磺丁脲对氯诺昔康转化的影响 | 第59-60页 |
·讨论 | 第60-62页 |
第六章 结论 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-68页 |
致谢 | 第68-69页 |
作者简历 | 第69页 |
发表论文 | 第69-70页 |
附图 | 第70-73页 |