缩写表 | 第1-5页 |
中文摘要 | 第5-7页 |
英文摘要 | 第7-9页 |
1. 前言 | 第9-22页 |
1.1 ABA的生物合成及其对渗透胁迫应答基因的表达调控制 | 第9-14页 |
1.1.1 ABA的生物合成 | 第9-12页 |
1.1.2 los5突变体的筛选和鉴定 | 第12-13页 |
1.1.3 ABA对胁迫应答基因的表达调控 | 第13-14页 |
1.2 保卫细胞ABA信号转导 | 第14-21页 |
1.2.1 气孔保卫细胞的特点 | 第14-15页 |
1.2.2 ABA结合位点及受体 | 第15-16页 |
1.2.3 二级信号 | 第16-18页 |
1.2.4 ABA对离子通道的调节 | 第18-19页 |
1.2.5 保卫细胞H_2O_2的产生及其对气孔运动的调节 | 第19-21页 |
1.3 论文的选题意义及依据 | 第21-22页 |
2. 材料与方法 | 第22-26页 |
2.1 材料培养 | 第22页 |
2.2 培养基及实验溶液 | 第22-23页 |
2.3 植株含水量测定 | 第23页 |
2.4 细胞活力检测 | 第23页 |
2.4.1 表皮条保卫细胞活力检测 | 第23页 |
2.4.2 保卫细胞原生质体活力检测 | 第23页 |
2.5 表皮条生物分析 | 第23页 |
2.6 荧光探针的负载 | 第23-24页 |
2.7 激光扫描共聚焦检测技术 | 第24页 |
2.8 保卫细胞原生质体的游离 | 第24页 |
2.9 膜片钳实验 | 第24-26页 |
3. 结果与分析 | 第26-46页 |
3.1 整体植株形态分析 | 第26-27页 |
3.1.1 生长发育过程中形态特征 | 第26页 |
3.1.2 植株地上部分含水量测定 | 第26-27页 |
3.2 表皮条生物分析 | 第27-32页 |
3.2.1 表皮条保卫细胞活力检测 | 第27页 |
3.2.2 不同浓度的NaCl对气孔开度的影响 | 第27-28页 |
3.2.3 ABA对气孔开度的影响 | 第28-29页 |
3.2.4 不同浓度的H_2O_2对气孔开度的影响 | 第29-30页 |
3.2.5 CAT对NaCl及NaCl+ABA诱导气孔关闭的影响 | 第30-31页 |
3.2.6 Vc对NaCl及NaCl+ABA诱导气孔关闭的影响 | 第31-32页 |
3.3 保卫细胞内H_2O_2产生的荧光探针检测 | 第32-37页 |
3.3.1 外源NaCl诱导保卫细胞H_2O_2的产生 | 第32-34页 |
3.3.2 外源NaCl+ABA诱导保卫细胞H_2O_2的产生 | 第34-35页 |
3.3.3 胞外CAT及Vc对NaCl诱导保卫细胞H_2O_2产生的影响 | 第35-36页 |
3.3.4 胞外CAT及Vc对NaCl+ABA诱导保卫细胞H_2O_2产生的影响 | 第36-37页 |
3.4 保卫细胞质膜内向K~+通道分析 | 第37-46页 |
3.4.1 保卫细胞原生质体的游离 | 第37-38页 |
3.4.2 保卫细胞原生质体全细胞K~+电流特性 | 第38-40页 |
3.4.3 NaCl及ABA对保卫细胞质膜内向K~+电流的影响 | 第40-42页 |
3.4.4 H_2O_2对保卫细胞质膜内向K~+电流的影响 | 第42-44页 |
3.4.5 CAT对NaCl及NaCl+ABA抑制质膜内向K~+电流的影响 | 第44-46页 |
4. 讨论 | 第46-51页 |
4.1 NaCl诱导保卫细胞ABA产生 | 第46-47页 |
4.2 NaCl胁迫条件下ABA诱导气孔关闭 | 第47-48页 |
4.3 H_2O_2在诱导气孔关闭中的作用 | 第48-51页 |
5. 结论 | 第51-52页 |
6. 参考文献 | 第52-58页 |
致谢 | 第58页 |