| 英文缩略语表 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-17页 |
| 材料和方法 | 第17-28页 |
| 1. 药品 | 第17-18页 |
| 2. 仪器及工具软件 | 第18页 |
| 3. 实验动物 | 第18页 |
| 4. 吗啡镇痛耐受的引导及评估 | 第18-19页 |
| 5. 鞘内埋管手术方法 | 第19-20页 |
| 6. 腰椎穿刺注射方法 | 第20页 |
| 7. RNA干扰实验 | 第20-21页 |
| 8. 痛阈测定的行为学实验 | 第21-22页 |
| a) 机械痛阈的测定:von Frey测试 | 第21-22页 |
| b) 热痛阈的测定:Hargreaves测试 | 第22页 |
| 9. 脊髓细胞混合原代培养 | 第22-23页 |
| 10. 免疫组织化学染色 | 第23-25页 |
| 11. 蛋白质印记法 | 第25-27页 |
| 12. 统计学分析 | 第27-28页 |
| 附录:常用溶液及配制 | 第28-33页 |
| a) 脊髓细胞原代培养部分 | 第28页 |
| b) 免疫组织化学染色部分 | 第28-29页 |
| c) 蛋白质印记法部分 | 第29-33页 |
| 结果 | 第33-54页 |
| 1. 长期吗啡注射引起镇痛耐受以及脊髓P2X7R表达的改变 | 第33-35页 |
| a) 吗啡镇痛耐受模型的建立 | 第33-34页 |
| b) 脊髓P2X7R表达上调 | 第34-35页 |
| 2. 脊髓P2X7R受体分布的形态学研究 | 第35-37页 |
| a) 混合培养脊髓细胞的免疫组织化学染色 | 第35页 |
| b) 脊髓切片的免疫组织化学染色 | 第35-37页 |
| 3. 药理学阻断脊髓P2X7R对吗啡镇痛耐受的抑制作用 | 第37-45页 |
| a) P2X7R阻断剂oxATP抑制吗啡镇痛耐受的产生 | 第38-40页 |
| b) P2X7R阻断剂BBG的抑制吗啡镇痛耐受的产生 | 第40-44页 |
| c) P2X7R阻断剂BBG不能影响已建立的吗啡镇痛耐受 | 第44-45页 |
| 4. 脊髓P2X7R的RNA干扰对吗啡镇痛耐受的抑制作用 | 第45-48页 |
| a) RNA干扰对脊髓P2X7R的沉默效果 | 第46-47页 |
| b) RNA干扰抑制吗啡镇痛耐受的建立 | 第47-48页 |
| 5. 脊髓P2X7R对小胶质细胞激活的作用 | 第48-54页 |
| a) 长期吗啡注射上调脊髓的Iba1蛋白水平 | 第49页 |
| b) 干扰P2X7R的功能抑制Iba1的上调 | 第49-54页 |
| 讨论 | 第54-57页 |
| 总结 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 综述 | 第67-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 附录 | 第78-79页 |
