| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 目录 | 第12-16页 |
| 本文主要缩略语表 | 第16-18页 |
| 第一章 引言 | 第18-36页 |
| 第一节 研究背景 | 第18-33页 |
| ·围产期与宫内发育受限 | 第18-20页 |
| ·围产期 | 第18页 |
| ·宫内发育受限 | 第18-19页 |
| ·宫内发育受限的预防和治疗 | 第19-20页 |
| ·围产期营养不良的神经发育研究 | 第20-25页 |
| ·营养与婴儿及儿童神经发育测评简介 | 第20-24页 |
| ·围产期营养不良儿童的神经发育评估研究 | 第24-25页 |
| ·围产期营养不良的动物模型 | 第25-27页 |
| ·围产期营养不良与脑组织发育 | 第27-31页 |
| ·围产期蛋白质和碳水化合物不足 | 第28-29页 |
| ·围产期铁、锌、铜和长链-不饱和脂肪酸等不足 | 第29-31页 |
| ·胎儿体重 | 第31页 |
| ·围产期营养不良与后期代谢性疾病 | 第31-33页 |
| 第二节 研究目的、意义和内容 | 第33-34页 |
| ·本论文的研究目的 | 第33-34页 |
| ·意义 | 第34页 |
| ·主要研究内容 | 第34页 |
| 第三节 本论文的结构安排 | 第34-36页 |
| 第二章 围产期食物限制动物模型的建立 | 第36-49页 |
| 第一节 前言 | 第36-40页 |
| ·动物脑发育与人类的相关关系 | 第36-39页 |
| ·常用的围产期食物限制模型 | 第36-37页 |
| ·不同动物的孕期长度及特点 | 第37-38页 |
| ·人与大小鼠脑发育时间比较 | 第38页 |
| ·人与大鼠神经(脑)发育不同时间的主要事件 | 第38-39页 |
| ·动物研究结果与人类的可能关系 | 第39页 |
| ·围产期食物限制的测量指标 | 第39-40页 |
| 第二节 材料与方法 | 第40-42页 |
| ·主要实验材料 | 第40页 |
| ·实验动物 | 第40页 |
| ·大鼠饲料配方 | 第40页 |
| ·大鼠饮水 | 第40页 |
| ·模型制作主要流程 | 第40-42页 |
| ·预实验确定正常组大鼠每日摄食饲料量 | 第40-41页 |
| ·大鼠围产期50%食物限制模型的建立 | 第41-42页 |
| ·幼仔性别的分辨 | 第42页 |
| ·测定指标 | 第42页 |
| ·孕鼠体重测量及窝效应 | 第42页 |
| ·新生鼠体重测量 | 第42页 |
| ·幼仔肛殖距测量 | 第42页 |
| ·统计学处理 | 第42页 |
| 第三节 结果 | 第42-45页 |
| ·围产期食物限制对孕鼠体重及窝效应的影响 | 第42-45页 |
| ·新生鼠体重测量 | 第45页 |
| ·新生鼠肛殖距测量 | 第45页 |
| 第四节 讨论 | 第45-49页 |
| ·动物模型以及影响因素 | 第46-47页 |
| ·围产期食物限制对孕鼠体重及窝效应的影响 | 第47页 |
| ·围产期食物限制影响子鼠发育的可能机制 | 第47页 |
| ·小结 | 第47-49页 |
| 第三章 围产期食物限制对新生子代大鼠身体发育和神经行为的影响 | 第49-67页 |
| 第一节 前言 | 第49-55页 |
| ·神经行为发育的概述 | 第49页 |
| ·神经行为发育的测试项目 | 第49-50页 |
| ·神经行为发育的测试过程 | 第50-51页 |
| ·神经行为发育测试中应特别注意的问题 | 第51-53页 |
| ·神经发育中离子通道功能的变化 | 第53-55页 |
| ·离子通道的分类 | 第53页 |
| ·通道离子的研究方法 | 第53-54页 |
| ·神经发育中离子通道电流的变化 | 第54-55页 |
| 第二节 材料与方法 | 第55-56页 |
| ·主要实验材料 | 第55页 |
| ·实验动物 | 第55页 |
| ·主要实验仪器 | 第55页 |
| ·主要实验流程 | 第55-56页 |
| ·测量耳廓分离(开耳)的动物数 | 第55页 |
| ·测量睁眼的动物数 | 第55-56页 |
| ·测量毛发生长的动物数 | 第56页 |
| ·测量门齿萌出的动物数 | 第56页 |
| ·测量完成翻正翻射的动物数 | 第56页 |
| ·测量完成负性趋地反射的动物数 | 第56页 |
| ·测量完成悬崖回避反射的动物数 | 第56页 |
| ·数据统计处理 | 第56页 |
| 第三节 结果 | 第56-63页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠身体生长的影响 | 第56-60页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠耳廓分离的影响 | 第57页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠睁眼的影响 | 第57-58页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠毛发生长的影响 | 第58-59页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠门齿萌出的影响 | 第59-60页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠神经反射的影响 | 第60-63页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠翻正反射的影响 | 第60-61页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠悬崖回避反射的影响 | 第61-62页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠负性趋地反射的影响 | 第62-63页 |
| 第四节 讨论 | 第63-67页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠身体生长的影响 | 第64页 |
| ·围产期食物限制对子代新生大鼠神经反射的影响 | 第64-65页 |
| ·围产期食物限制影响子代新生大鼠表面翻正反射和负性趋地反射 | 第64-65页 |
| ·围产期食物限制影响子代新生大鼠悬崖回避反射 | 第65页 |
| ·小结 | 第65-67页 |
| 第四章 围产期食物限制对成年雄性子代大鼠空间学习与记忆能力的影响 | 第67-83页 |
| 第一节 前言 | 第67-73页 |
| ·学习和记忆的概述 | 第67页 |
| ·学习和记忆的类型 | 第67-69页 |
| ·学习障碍与遗忘 | 第69页 |
| ·Morris水迷宫--一个用于测量认知功能的工具 | 第69-70页 |
| ·长时程增强 | 第70-72页 |
| ·突触 | 第71页 |
| ·关于长时程增强现象 | 第71页 |
| ·高频刺激与长时程增强现象 | 第71-72页 |
| ·围产期营养不良导致海马依赖性认知下降的研究进展 | 第72-73页 |
| 第二节 材料和方法 | 第73-75页 |
| ·主要实验材料 | 第73页 |
| ·实验动物 | 第73页 |
| ·主要实验仪器 | 第73页 |
| ·计算机软件 | 第73页 |
| ·主要实验流程 | 第73-74页 |
| ·空间学习与记忆能力测试 | 第74页 |
| ·海马CA1区LTP的记录 | 第74页 |
| ·数据统计分析 | 第74-75页 |
| 第三节 结果 | 第75-80页 |
| ·围产期食物限制对子代成年大鼠水迷宫学习与记忆行为的影响 | 第75-78页 |
| ·围产期食物限制对海马CA1区LTP的影响 | 第78-80页 |
| 第四节 讨论 | 第80-83页 |
| ·围产期食物限制对子代成年大鼠空间学习与记忆行为的影响 | 第80-81页 |
| ·围产期食物限制对子代成年大鼠海马CA1区LTP的影响 | 第81页 |
| ·研究围产期食物限制的意义 | 第81页 |
| ·小结 | 第81-83页 |
| 第五章 围产期食物限制对成年雄性子代大鼠海马神经元型一氧化氮合酶阳性细胞密度的影响 | 第83-98页 |
| 第一节 前言 | 第83-90页 |
| ·一氧化氮及一氧化氮合酶 | 第83-84页 |
| ·一氧化氮概述 | 第83-84页 |
| ·一氧化氮合酶概述 | 第84页 |
| ·神经元型一氧化氮合酶在学习与记忆过程中的变化和作用 | 第84-85页 |
| ·NO及nNOS与LTP的关系 | 第85-86页 |
| ·一氧化氮合酶的免疫组化测量 | 第86-90页 |
| ·免疫组织化学原理解述 | 第86-87页 |
| ·免疫组织化学染色步骤 | 第87-89页 |
| ·免疫组织化学染色结果分析 | 第89-90页 |
| 第二节 材料与方法 | 第90-91页 |
| ·主要实验材料 | 第90页 |
| ·实验动物 | 第90页 |
| ·主要实验试剂 | 第90页 |
| ·主要实验仪器 | 第90页 |
| ·主要实验流程 | 第90-91页 |
| ·统计学分析 | 第91页 |
| 第三节 结果 | 第91-96页 |
| ·围产期食物限制对子代大鼠海马各区nNOS阳性细胞密度的影响 | 第91-95页 |
| ·围产期食物限制影响子代大鼠海马各区nNOS阳性细胞密度的区域性差异 | 第95-96页 |
| 第四节 讨论 | 第96-98页 |
| ·NO在学习与记忆中的作用 | 第96页 |
| ·NO在LTP的关系 | 第96-98页 |
| 第六章 主要结论 | 第98-101页 |
| 第一节 本论文主要结论 | 第98页 |
| 第二节 主要创新点 | 第98-99页 |
| 第三节 研究前景展望 | 第99-101页 |
| 第七章 参考文献 | 第101-113页 |
| 致谢 | 第113-114页 |
| 个人简历 | 第114页 |
| 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第114页 |
