| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-22页 |
| 1.1 氟喹诺酮类和磺胺甲恶唑抗生素 | 第8-9页 |
| 1.1.1 水体中氟喹诺酮和磺胺甲恶唑抗生素的来源 | 第8页 |
| 1.1.2 水体中残留的氟喹诺酮和磺胺甲恶唑抗生素现状 | 第8-9页 |
| 1.1.3 水体中残留的氟喹诺酮和磺胺甲恶唑抗生素危害 | 第9页 |
| 1.2 氟喹诺酮类和磺胺甲恶唑抗生素移除方法 | 第9-10页 |
| 1.3 氟喹诺酮类和磺胺甲恶唑抗生素生物移除研究进展 | 第10-14页 |
| 1.3.1 微生物纯培养移除CIP,NOR和SMX研究进展 | 第10-13页 |
| 1.3.2 微生物共培养移除CIP,NOR和SMX研究进展 | 第13-14页 |
| 1.4 白腐真菌及其生物移除抗生素研究进展 | 第14-19页 |
| 1.4.1 白腐真菌及其胞外酶 | 第14-15页 |
| 1.4.2 白腐真菌细胞培养移除CIP,NOR和SMX研究进展 | 第15-17页 |
| 1.4.3 白腐真菌胞外酶移除CIP,NOR和SMX研究进展 | 第17-19页 |
| 1.5 吐温80介导的污染物移除研究进展 | 第19页 |
| 1.6 本文的立题背景、意义、依据及主要研究内容 | 第19-22页 |
| 1.6.1 立题背景、意义 | 第19-20页 |
| 1.6.2 立题依据 | 第20页 |
| 1.6.3 主要研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 单菌和混菌生物移除CIP,NOR和SMX | 第22-44页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料与方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 实验菌种 | 第22-23页 |
| 2.2.2 培养基 | 第23页 |
| 2.2.3 培养条件 | 第23-24页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.5 主要试剂 | 第25-26页 |
| 2.2.6 分析方法 | 第26-27页 |
| 2.2.7 溶液配制 | 第27-28页 |
| 2.3 实验设计 | 第28页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第28-41页 |
| 2.4.1 单菌在PDB培养基中移除CIP,NOR和SMX | 第28-30页 |
| 2.4.2 单菌在Kirk培养基中移除CIP,NOR和SMX | 第30-31页 |
| 2.4.3 单菌在Kirk培养基中移除CIP,NOR和SMX混合物 | 第31-33页 |
| 2.4.4 混菌在Kirk培养基中移除CIP,NOR,SMX及其混合物. | 第33-35页 |
| 2.4.5 吐温80对单菌和混菌移除CIP,NOR和SMX混合物的影响 | 第35-41页 |
| 2.5 小结 | 第41-44页 |
| 第3章 生物吸附和生物转化对CIP,NOR和SMX移除的影响 | 第44-66页 |
| 3.1 引言 | 第44页 |
| 3.2 材料与方法 | 第44-47页 |
| 3.2.1 实验菌种 | 第44页 |
| 3.2.2 培养基 | 第44-45页 |
| 3.2.3 培养条件 | 第45页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第45页 |
| 3.2.5 主要试剂 | 第45-46页 |
| 3.2.6 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.2.7 溶液配制 | 第47页 |
| 3.3 实验设计 | 第47-48页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第48-64页 |
| 3.4.1 生物吸附对CIP,NOR和SMX移除的影响 | 第48-52页 |
| 3.4.2 胞外氧化酶对CIP,NOR和SMX移除的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.3 细胞色素P450体系对CIP,NOR和SMX移除的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.4 CIP,NOR和SMX转化产物 | 第55-62页 |
| 3.4.5 CIP,NOR,SMX及其转化产物的生物毒性 | 第62-64页 |
| 3.5 小结 | 第64-66页 |
| 第4章 结论和展望 | 第66-68页 |
| 4.1 结论 | 第66-67页 |
| 4.2 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-80页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
