| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 主要缩略词一览表 | 第12-13页 |
| 第一章 论文综述 | 第13-26页 |
| ·引言 | 第13-14页 |
| ·毒死蜱的理化特性及神经发育毒性 | 第14-16页 |
| ·毒死蜱的理化特性 | 第14-15页 |
| ·毒死蜱的神经发育毒性 | 第15-16页 |
| ·胚胎神经系统发育 | 第16-19页 |
| ·胚胎神经管的形成 | 第16页 |
| ·胚胎神经细胞的分裂及迁移 | 第16-19页 |
| ·神经干细胞的对称分裂与不对称分裂模式 | 第19-24页 |
| ·对称分裂与不对称分裂 | 第19页 |
| ·分裂平面的定向在分裂模式转换中的作用机制 | 第19-24页 |
| ·在果蝇成神经细胞中分裂平面的定向 | 第20-22页 |
| ·分裂平面的定向和形态不对称性 | 第20-21页 |
| ·与分裂平面取向相关的蛋白复合体 | 第21-22页 |
| ·在哺乳动物神经前体细胞中分裂平面的定向 | 第22-24页 |
| ·研究背景与意义 | 第24页 |
| ·研究内容与创新点 | 第24-25页 |
| ·课题来源 | 第25-26页 |
| 第二章 低浓度有机磷农药毒死蜱对小鼠胚胎神经细胞有丝分裂平面取向的影响 | 第26-47页 |
| 前言 | 第26-27页 |
| ·实验材料 | 第27-29页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·试剂及药品 | 第27-28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-33页 |
| ·实验动物给药处理及定时胚胎的制备 | 第29-30页 |
| ·石蜡常规切片步骤 | 第30-32页 |
| ·拍照分析 | 第32-33页 |
| ·有丝分裂平面取向的测量 | 第33页 |
| ·统计学分析 | 第33页 |
| ·实验结果 | 第33-43页 |
| ·定时胚胎的制备 | 第33-34页 |
| ·胚胎大脑新皮质的组织发生 | 第34-35页 |
| ·VZ区APs的有丝分裂平面取向 | 第35-36页 |
| ·SVZ区IPs的有丝分裂平面取向 | 第36-37页 |
| ·不同时期VZ区脑室表层有丝分裂细胞的定量 | 第37-38页 |
| ·CPF对小鼠胚胎整体形态的影响 | 第38页 |
| ·CPF对VZ区APs分裂平面取向的影响 | 第38-41页 |
| ·CPF对SVZ区IPs分裂平面取向的影响 | 第41-43页 |
| ·CPF对VZ区脑室表层有丝分裂细胞比率的影响 | 第43页 |
| ·讨论 | 第43-47页 |
| 第三章 低浓度毒死蜱胚胎早期暴露对子代鼠不同脑区细胞形态的远期效应 | 第47-64页 |
| 前言 | 第47页 |
| ·实验材料 | 第47-48页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·主要药品 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47-48页 |
| ·主要仪器设备 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-54页 |
| ·实验动物处理及分组 | 第48页 |
| ·灌注固定及脑组织解剖 | 第48-49页 |
| ·石蜡常规切片步骤 | 第49-51页 |
| ·形态学定位分析 | 第51页 |
| ·神经细胞体视学参数测量 | 第51-54页 |
| ·统计学处理 | 第54页 |
| ·实验结果 | 第54-61页 |
| ·CPF对子代鼠的基本影响 | 第54页 |
| ·CPF对子代鼠海马各区组织细胞的影响 | 第54-58页 |
| ·CPF对子代鼠海马CA1区组织细胞的影响 | 第54-55页 |
| ·CPF对子代鼠海马CA3区组织细胞的影响 | 第55-56页 |
| ·CPF对子代鼠海马DG区组织细胞的影响 | 第56-58页 |
| ·CPF对子代鼠大脑皮层S1区组织细胞的影响 | 第58-60页 |
| ·CPF对子代鼠纹状体区组织细胞的影响 | 第60-61页 |
| ·讨论 | 第61-64页 |
| 第四章 实验总结与展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第76页 |
| 一、发表论文 | 第76页 |
| 二、参与课题 | 第76页 |