摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-13页 |
第一章 引言 | 第13-20页 |
·生物被膜的简介 | 第13-15页 |
·BF的抗逆性机制 | 第13-14页 |
·BF的一般防治策略 | 第14-15页 |
·单核细胞增生李斯特菌BF的形成过程及结构 | 第15-17页 |
·PrfA因子简介 | 第16-17页 |
·SigB因子简介 | 第17页 |
·PTS系统 | 第17-20页 |
·甘油代谢 | 第18页 |
·葡萄糖代谢 | 第18-20页 |
第二章 PrfA和SigB对LM生物被膜形成的影响初探 | 第20-24页 |
·实验材料 | 第20-21页 |
·菌株 | 第20页 |
·器材 | 第20-21页 |
·药品及配置 | 第21页 |
·实验方法 | 第21-22页 |
·菌种活化 | 第21页 |
·扩大培养 | 第21页 |
·生物被膜的制备 | 第21页 |
·1%的结晶紫染色与数据处理 | 第21-22页 |
·倒置显微镜观察生物被膜的形态 | 第22页 |
·实验结果 | 第22-23页 |
·EGD、EGDe△prfA、EGDe△sigB和EGDe△prfA△sigB以及LI生物被膜形成能力的比较 | 第22-23页 |
·讨论 | 第23-24页 |
第三章 PrfA在LM及LI中对生物被膜形成的影响 | 第24-32页 |
·实验材料 | 第24-25页 |
·菌株 | 第24页 |
·器材 | 第24-25页 |
·药品及配置 | 第25页 |
·实验方法 | 第25-26页 |
·构建菌株LI-pERL3-prfA~*和EGDe△prfA-pERL3-prfA~* | 第25页 |
·菌种活化 | 第25页 |
·扩大培养 | 第25页 |
·生物被膜的制备 | 第25-26页 |
·1%的结晶紫染色与数据处理 | 第26页 |
·倒置显微镜观察生物被膜的形态 | 第26页 |
·实验结果 | 第26-30页 |
·LI-pERL3-prfA~*和EGDe△prfA-pERL3-prfA~*的构建结果 | 第26-27页 |
·EGD、EGD△prfA和LI生物被膜形成能力的比较 | 第27页 |
·PrfA对无害李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第27-29页 |
·PrfA对单核细胞增生李斯特菌EGDe生物被膜形成的影响 | 第29-30页 |
·讨论 | 第30-32页 |
第四章 PRFA在不同碳源的培养基中对LM生物被膜形成的影响 | 第32-43页 |
·实验材料 | 第32-35页 |
·菌株 | 第32-33页 |
·器材 | 第33页 |
·药品 | 第33页 |
·主要实验试剂的配制 | 第33-35页 |
·实验方法 | 第35-36页 |
·菌种活化 | 第35页 |
·扩大培养 | 第35页 |
·生物被膜的制备 | 第35页 |
·1%的结晶紫染色与数据处理 | 第35-36页 |
·倒置显微镜观察生物被膜的形态 | 第36页 |
·实验结果 | 第36-40页 |
·三种菌株在复杂糖类作为碳源的BHI培养基中的生物被膜形成能力的比较 | 第36-37页 |
·三种菌株在葡萄糖作为碳源的MM培养基中的生物被膜形成能力的比较 | 第37-39页 |
·三种菌株在甘油作为碳源的MM培养基中的生物被膜形成能力的比较 | 第39-40页 |
·讨论 | 第40-43页 |
第五章 SigB对LM生物被膜形成的影响 | 第43-48页 |
·实验材料 | 第43页 |
·菌株 | 第43页 |
·器材 | 第43页 |
·药品及配置 | 第43页 |
·实验方法 | 第43-44页 |
·菌种活化 | 第43-44页 |
·扩大培养 | 第44页 |
·生物被膜的制备 | 第44页 |
·1%的结晶紫染色与数据处理 | 第44页 |
·倒置显微镜观察生物被膜的形态 | 第44页 |
·实验结果 | 第44-46页 |
·EGD、EGD△sigB和LI在0.3%胆汁酸盐的刺激作用下生物被膜形成能力的比较 | 第44-46页 |
·讨论 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |