中文摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第1章 绪论 | 第14-35页 |
1.1 刚度可调材料 | 第14-19页 |
1.1.1 刚度可调材料简介 | 第14-16页 |
1.1.2 刚度可调材料的应用 | 第16-19页 |
1.2 材料刚度的调控手段 | 第19-26页 |
1.2.1 溶剂调控 | 第20-22页 |
1.2.2 电刺激调控 | 第22-23页 |
1.2.3 光调控 | 第23-24页 |
1.2.4 离子调控 | 第24-25页 |
1.2.5 其他手段调控 | 第25-26页 |
1.3 立体选择性相互作用诱导的材料宏观性质的变化 | 第26-31页 |
1.3.1 立体选择性相互作用诱导的材料形貌的调控 | 第27-28页 |
1.3.2 立体选择性相互作用诱导的材料浸润性的改变 | 第28-30页 |
1.3.3 立体选择性相互作用诱导的凝胶宏观性质的改变 | 第30-31页 |
1.4 本论文的研究工作 | 第31-35页 |
1.4.1 课题的研究背景 | 第31-32页 |
1.4.2 课题的主要研究内容 | 第32-33页 |
1.4.3 课题的意义及创新性 | 第33-35页 |
第2章 基于糖-寡肽相互作用的二肽聚乙烯亚胺界面材料的响应性研究 | 第35-74页 |
2.1 引言 | 第35-37页 |
2.2 实验部分 | 第37-51页 |
2.2.1 实验原料与主要试剂 | 第37-38页 |
2.2.2 测试表征与仪器 | 第38-39页 |
2.2.3 二肽功能单元的合成、纯化与表征 | 第39-42页 |
2.2.4 二肽聚乙烯亚胺的合成与表征 | 第42-45页 |
2.2.5 聚合物在石英微晶体天平金芯片的修饰 | 第45-46页 |
2.2.6 聚合物膜对手性单糖吸附动力学研究 | 第46-47页 |
2.2.7 聚合物膜刚度、形貌与粘附力研究 | 第47-51页 |
2.3 结果与讨论 | 第51-72页 |
2.3.1 聚合物PEI-g-D-DF的表征 | 第51-53页 |
2.3.2 QCM-D金芯片基底聚合物膜的表征分析 | 第53-56页 |
2.3.3 聚合物膜PEI-g-D-DF对手性单糖吸附动力学研究分析 | 第56-64页 |
2.3.4 聚合物膜PEI-g-D-DF表面AFM微观力学性质研究分析 | 第64-72页 |
2.4 本章小结 | 第72-74页 |
第3章 PEI-g-D-DF与单糖相互作用响应性机制研究 | 第74-94页 |
3.1 引言 | 第74-75页 |
3.2 实验部分 | 第75-82页 |
3.2.1 实验试剂 | 第75-76页 |
3.2.2 测试表征与仪器 | 第76-77页 |
3.2.3 荧光滴定法测定分子间相互作用 | 第77-80页 |
3.2.4 利用核磁氢谱研究分子间作用力 | 第80页 |
3.2.5 红外光谱研究聚合物PEI-g-D-DF与L/D-核糖的相互作用 | 第80-81页 |
3.2.6 聚合物PEI-g-D-DF水合半径测试 | 第81页 |
3.2.7 聚合物PEI-g-D-DF与L/D-核糖、L/D-脱氧核糖结合方式计算 | 第81-82页 |
3.3 结果与讨论 | 第82-92页 |
3.3.1 α-D-Asp-D-Phe、三乙基四胺与单糖分子间的相互作用研究 | 第82-86页 |
3.3.2 PEI-g-D-DF与单糖分子间的相互作用研究 | 第86-89页 |
3.3.3 聚合物膜PEI-g-D-DF刚度转变的分子机制 | 第89-92页 |
3.4 本章小结 | 第92-94页 |
第4章 聚合物膜PEI-g-D-DF在对映体过量值测量和细胞工程的应用 | 第94-106页 |
4.1 引言 | 第94-97页 |
4.2 实验部分 | 第97-100页 |
4.2.1 实验原料和主要试剂 | 第97页 |
4.2.2 测试表征与仪器 | 第97-98页 |
4.2.3 金涂层基底聚合物膜PEI-g-D-DF的制备 | 第98页 |
4.2.4 核糖和脱氧核糖对映体过量值的测量 | 第98-99页 |
4.2.5 人体卵巢透明癌纤维细胞培养 | 第99-100页 |
4.3 结果与讨论 | 第100-104页 |
4.3.1 核糖对映体过量值的测定 | 第100-102页 |
4.3.2 利用聚合物膜PEI-g-D-DF调控细胞行为 | 第102-104页 |
4.4 本章小结 | 第104-106页 |
第5章 基于聚合物PEI-g-D-DF的糖分离色谱柱材料的开发与应用 | 第106-120页 |
5.1 引言 | 第106-108页 |
5.2 实验部分 | 第108-112页 |
5.2.1 实验原料和主要试剂 | 第108-109页 |
5.2.2 测试表征与仪器 | 第109-110页 |
5.2.3 硅球基底接枝PEI-g-D-DF及对应色谱柱的制备 | 第110-111页 |
5.2.4 PEI-g-D-DF色谱柱糖分离实验 | 第111-112页 |
5.3 结果与讨论 | 第112-118页 |
5.3.1 PEI-g-D-DF@SiO_2的表征 | 第112-115页 |
5.3.2 PEI-g-D-DF色谱柱糖分离性能 | 第115-118页 |
5.4 本章小结 | 第118-120页 |
第6章 基于二肽Asp-Phe单元的对称性破缺研究 | 第120-135页 |
6.1 引言 | 第120-121页 |
6.2 实验部分 | 第121-124页 |
6.2.1 实验原料和主要试剂 | 第121-122页 |
6.2.2 测试表征与仪器 | 第122-123页 |
6.2.3 手性凝胶因子L,L-G和D,D-G的合成和表征 | 第123-124页 |
6.3 结果与讨论 | 第124-134页 |
6.3.1 L,L-G和D,D-G的分子手性和光响应特性研究 | 第124-126页 |
6.3.2 L,L-G和D,D-G的凝胶-溶液转变实验 | 第126-128页 |
6.3.3 L,L-G和D,D-G的组装行为研究 | 第128-131页 |
6.3.4 对称性破缺的分子机制研究 | 第131-134页 |
6.4 本章小结 | 第134-135页 |
第7章 论文结论与展望 | 第135-139页 |
7.1 论文结论 | 第135-137页 |
7.2 展望 | 第137-139页 |
参考文献 | 第139-154页 |
致谢 | 第154-156页 |
攻读博士学位期间主要的研究成果 | 第156页 |