致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
第一章 绪论 | 第18-48页 |
1.1 Pb的污染现状及危害 | 第19-28页 |
1.1.1 Pb的理化性质 | 第19页 |
1.1.2 Pb的毒性 | 第19-20页 |
1.1.3 我国Pb环境污染现状 | 第20-28页 |
1.2 微生物对Pb的耐受及吸附累积 | 第28-34页 |
1.2.1 不同微生物对Pb的耐受能力 | 第28页 |
1.2.2 微生物对Pb的吸附累积 | 第28-29页 |
1.2.3 影响微生物吸附累积Pb的因素 | 第29-34页 |
1.3 微生物对重金属的形态转化 | 第34-40页 |
1.3.1 胞外矿化作用 | 第34-38页 |
1.3.2 胞内耐受及形态转化 | 第38-39页 |
1.3.3 重金属形态转化的检测方法 | 第39-40页 |
1.4 微生物与重金属的分子作用机制 | 第40-45页 |
1.4.1 微生物的分子机制检测方法 | 第40-42页 |
1.4.2 微生物在重金属胁迫下的蛋白组学响应 | 第42-45页 |
1.4.3 微生物在重金属胁迫下的代谢组学响应 | 第45页 |
1.5 论文研究目标及基本思路 | 第45-48页 |
1.5.1 研究目标与意义 | 第45-46页 |
1.5.2 研究内容 | 第46-47页 |
1.5.3 研究思路 | 第47-48页 |
第二章 P. oxalicum SL2对Pb的耐性及吸附累积规律 | 第48-70页 |
2.1 引言 | 第48-49页 |
2.2 材料和方法 | 第49-52页 |
2.2.1 微生物材料及培养基 | 第49页 |
2.2.2 Pb~(2+)耐受性(MIC) | 第49页 |
2.2.3 最低抑制浓度(EC_(50)值) | 第49-50页 |
2.2.4 不同初始pH值对Pb~(2+)去除的影响 | 第50页 |
2.2.5 不同初始Pb~(2+)浓度对去除率的影响 | 第50页 |
2.2.6 胞外吸附和胞内吸收 | 第50-51页 |
2.2.7 吸附等温线 | 第51页 |
2.2.8 吸附动力学 | 第51-52页 |
2.2.10 傅里叶红外(FTIR)检测 | 第52页 |
2.2.11 数据统计分析 | 第52页 |
2.3 结果与分析 | 第52-64页 |
2.3.1 P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的耐受性 | 第52-53页 |
2.3.2 不同初始pH值下P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的去除效率 | 第53-55页 |
2.3.3 不同初始Pb~(2+)浓度处理下的葡萄糖消耗 | 第55-56页 |
2.3.4 不同初始Pb~(2+)浓度下P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的固定化及去除 | 第56-58页 |
2.3.5 不同浓度Pb作用下SL2的胞内吸收及胞外吸附量 | 第58-59页 |
2.3.6 吸附动力学 | 第59-60页 |
2.3.7 吸附等温线 | 第60-62页 |
2.3.8 菌丝体表面基团分析 | 第62-64页 |
2.4 讨论 | 第64-69页 |
2.4.1 P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的耐受能力 | 第64页 |
2.4.2 P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的去除规律 | 第64-65页 |
2.4.3 P. oxalicum SL2对Pb的胞外吸附特征 | 第65-69页 |
2.5 小结 | 第69-70页 |
第三章 Pb~(2+)在P. oxalicum SL2作用下的微生物结晶及形态转化机制 | 第70-92页 |
3.1 引言 | 第70-71页 |
3.2 材料和方法 | 第71-74页 |
3.2.1 微生物材料及培养基 | 第71页 |
3.2.2 培养方法 | 第71页 |
3.2.3 光学显微镜观察 | 第71页 |
3.2.5 扫描电子显微镜及能谱联用(SEM-EDS)观察 | 第71-72页 |
3.2.6 透射显微镜及能谱联用(TEM-EDS)观察 | 第72页 |
3.2.8 X射线衍射(XRD)分析 | 第72页 |
3.2.10 X射线吸收近边结构(XANES)分析 | 第72页 |
3.2.11 离子色谱检测方法 | 第72-73页 |
3.2.12 胞内谷胱甘肽及氧化型谷胱甘肽(GSH/GSSG)检测 | 第73页 |
3.2.13 胞内碱性磷酸酶(AKP)和酸性磷酸酶(ACP)检测 | 第73页 |
3.2.14 数据统计分析 | 第73-74页 |
3.3 结果与分析 | 第74-88页 |
3.3.1 次生矿物光镜观察及主要成分分析 | 第74-75页 |
3.3.2 菌丝体及次生矿物的SEM-EDS分析 | 第75-78页 |
3.3.3 P. oxalicum SL2形态学观察及次生矿物元素组成 | 第78-82页 |
3.3.4 菌丝体中Pb形态转化 | 第82-83页 |
3.3.5 胞内GSH及GSSG含量变化 | 第83-84页 |
3.3.6 柠檬酸与草酸产量的变化 | 第84-85页 |
3.3.7 溶液中磷酸氢根含量的变化 | 第85-86页 |
3.3.8 菌丝体中磷酸酶活性的变化 | 第86-88页 |
3.4 讨论 | 第88-90页 |
3.4.1 微生物结晶与重金属固定化的关系 | 第88页 |
3.4.2 有机酸对Pb形态转化的影响 | 第88-89页 |
3.4.3 磷与Pb形态转化的关系 | 第89页 |
3.4.4 谷胱甘肽对Pb形态转化的作用 | 第89-90页 |
3.5 小结 | 第90-92页 |
第四章 P. oxalicum SL2在Pb~(2+)胁迫下的蛋白组学响应机制 | 第92-119页 |
4.1 引言 | 第92-93页 |
4.2 材料和方法 | 第93-94页 |
4.2.1 菌丝体处理收集 | 第93页 |
4.2.2 Label-free试验流程 | 第93页 |
4.2.3 数据统计分析 | 第93-94页 |
4.3 结果与分析 | 第94-111页 |
4.3.1 肽段和蛋白质鉴定与定量结果评估 | 第94-97页 |
4.3.2 Pb~(2+)诱导的菌丝体蛋白差异表达 | 第97-107页 |
4.3.3 差异表达蛋白的功能分析 | 第107-108页 |
4.3.4 蛋白质聚类分析 | 第108-109页 |
4.3.5 差异表达蛋白的KEGG通路分析 | 第109-110页 |
4.3.6 差异表达蛋白质的互作网络分析 | 第110-111页 |
4.4 讨论 | 第111-117页 |
4.4.1 Pb~(2+)胁迫下菌丝体糖分解代谢与能量合成响应 | 第111-113页 |
4.4.2 Pb~(2+)胁迫下菌丝体氨基酸合成与信号传导响应 | 第113-115页 |
4.4.3 Pb~(2+)胁迫下菌丝体抗氧化应激及防御机制响应 | 第115-117页 |
4.5 小结 | 第117-119页 |
第五章 P. oxalicum SL2在Pb~(2+)胁迫下的代谢组响应机制 | 第119-153页 |
5.1 引言 | 第119-120页 |
5.2 材料和方法 | 第120页 |
5.2.1 菌丝体处理收集 | 第120页 |
5.2.2 非靶向代谢组学试验流程 | 第120页 |
5.2.3 数据分析 | 第120页 |
5.3 结果与分析 | 第120-146页 |
5.3.1 质量控制 | 第120-122页 |
5.3.2 各组样本的典型代谢谱图 | 第122-123页 |
5.3.3 数据预处理 | 第123-128页 |
5.3.4 显著性差异代谢物筛选 | 第128-143页 |
5.3.5 差异代谢物聚类分析 | 第143-145页 |
5.3.6 差异代谢物KEGG通路富集分析 | 第145-146页 |
5.4 讨论 | 第146-151页 |
5.4.1 信号传导通路 | 第146-147页 |
5.4.2 蛋白转运通路 | 第147-149页 |
5.4.3 三羧酸循环(TCA) | 第149-150页 |
5.4.4 糖代谢通路 | 第150-151页 |
5.4.5 核苷酸代谢通路 | 第151页 |
5.5 小结 | 第151-153页 |
第六章 研究结论、创新点及展望 | 第153-156页 |
6.1 研究结论 | 第153-154页 |
6.1.1 P. oxalicum SL2对Pb~(2+)的耐性及吸附累积规律 | 第153页 |
6.1.2 菌丝体中Pb~(2+)的形态转化机制 | 第153-154页 |
6.1.3 P. oxalicum SL2在Pb~(2+)胁迫下的蛋白质组响应机制 | 第154页 |
6.1.4 P. oxalicum SL2在Pb~(2+)胁迫下的代谢组响应机制 | 第154页 |
6.2 创新点 | 第154-155页 |
6.3 研究展望 | 第155-156页 |
参考文献 | 第156-185页 |
图索引 | 第185-187页 |
表索引 | 第187-188页 |
作者简历及攻读博士期间成果 | 第188-189页 |