| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-30页 |
| ·辅酶Q_(10)的概述 | 第11页 |
| ·辅酶Q_(10)的生理功能与应用 | 第11-16页 |
| ·辅酶Q_(10)的生理功能 | 第11-14页 |
| ·辅酶Q_(10)的应用 | 第14-16页 |
| ·国内外辅酶Q_(10)生产研究现状 | 第16-19页 |
| ·化学合成法 | 第17-18页 |
| ·动植物组织提取法 | 第18页 |
| ·植物细胞培养法 | 第18页 |
| ·微生物发酵法 | 第18-19页 |
| ·辅酶Q_(10)的分离提取研究 | 第19-21页 |
| ·溶剂萃取法 | 第19-20页 |
| ·吸附层析法 | 第20-21页 |
| ·皂化提取法 | 第21页 |
| ·辅酶Q_(10)的检测方法研究 | 第21-24页 |
| ·定性检测分析 | 第21-23页 |
| ·定量检测分析 | 第23-24页 |
| ·辅酶Q_(10)高产菌的选育研究 | 第24-27页 |
| ·辅酶Q_(10)高产菌的出发菌株 | 第24页 |
| ·菌种诱变及工程菌的构建 | 第24-26页 |
| ·诱变育种 | 第26-27页 |
| ·本课题研究的意义与研究内容 | 第27-30页 |
| ·本课题研究的意义 | 第27-28页 |
| ·本课题研究的主要内容 | 第28-30页 |
| 第2章 深红红螺菌1.5005菌株活化及种子培养基的优化 | 第30-44页 |
| ·材料 | 第30-32页 |
| ·菌种 | 第30页 |
| ·试剂与仪器 | 第30-32页 |
| ·培养基 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-35页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的活化 | 第32页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的保藏 | 第32页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的培养 | 第32-33页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株生长曲线的绘制 | 第33页 |
| ·辅酶Q_(10)的分离提取 | 第33-34页 |
| ·辅酶Q_(10)的检测 | 第34页 |
| ·辅酶Q_(10)标准曲线的绘制 | 第34页 |
| ·深红红螺菌1.5005种子培养基组分的优化 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-43页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的生长曲线图谱 | 第35-36页 |
| ·实验菌株辅酶Q_(10)与辅酶Q_(10)标准品的UV检测结果比较 | 第36-37页 |
| ·辅酶Q_(10)标准曲线制作结果 | 第37-38页 |
| ·种子培养基组分优化结果 | 第38-43页 |
| ·小结 | 第43-44页 |
| 第3章 深红红螺菌1.5005产辅酶Q_(10)发酵工艺优化研究 | 第44-54页 |
| ·材料 | 第44-46页 |
| ·菌种 | 第44页 |
| ·试剂与仪器 | 第44-45页 |
| ·培养基 | 第45-46页 |
| ·方法 | 第46-48页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的培养 | 第46页 |
| ·辅酶Q_(10)的分离提取 | 第46-47页 |
| ·辅酶Q_(10)的检测 | 第47页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株发酵工艺的优化 | 第47-48页 |
| ·发酵工艺优化结果与分析 | 第48-53页 |
| ·最佳发酵方式的优化 | 第48-49页 |
| ·最佳接种量的优化结果 | 第49-50页 |
| ·最佳发酵温度的确定 | 第50-51页 |
| ·最佳初始pH值的确定 | 第51页 |
| ·最佳装液量的确定 | 第51-52页 |
| ·最佳发酵时间的确定 | 第52-53页 |
| ·优化前后辅酶Q_(10)发酵单位比较 | 第53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 第4章 深红红螺菌1.5005辅酶Q_(10)的提取纯化工艺研究 | 第54-65页 |
| ·材料 | 第54-56页 |
| ·菌种 | 第54页 |
| ·试剂与仪器 | 第54-56页 |
| ·培养基 | 第56页 |
| ·方法 | 第56-60页 |
| ·深红红螺菌1.5005菌株的培养 | 第56页 |
| ·辅酶Q_(10)的分离提取 | 第56-57页 |
| ·辅酶Q_(10)的检测 | 第57页 |
| ·深红红螺菌1.5005细胞破壁法的选择 | 第57-58页 |
| ·二种冻融破壁法的比较 | 第58-59页 |
| ·辅酶Q_(10)提取纯化工艺的优化 | 第59-60页 |
| ·结果与分析 | 第60-64页 |
| ·深红红螺菌1.5005细胞破壁法的选择 | 第60页 |
| ·二种冻融破壁法的比较 | 第60-61页 |
| ·辅酶_(10)提取纯化工艺的优化结果 | 第61-64页 |
| ·小结 | 第64-65页 |
| 第5章 深红红螺菌1.5005高产辅酶Q_(10)的诱变育种研究 | 第65-78页 |
| ·材料 | 第65-67页 |
| ·菌种 | 第65页 |
| ·试剂与仪器 | 第65-67页 |
| ·培养基 | 第67页 |
| ·试剂的配制 | 第67页 |
| ·方法 | 第67-70页 |
| ·菌种培养方法 | 第67-68页 |
| ·辅酶Q_(10)的分离提取 | 第68页 |
| ·辅酶Q_(10)的检测 | 第68-69页 |
| ·深红红螺菌1.5005细胞菌悬液的制备 | 第69页 |
| ·深红红螺菌1.5005细胞单因素诱变处理 | 第69页 |
| ·深红红螺菌1.5005细胞紫外—亚硝基胍复合诱变处理 | 第69-70页 |
| ·筛选辅酶Q_(10)高产菌株 | 第70页 |
| ·发酵条件优化结果验证 | 第70页 |
| ·辅酶Q_(10)高产突变菌株稳定性实验 | 第70页 |
| ·突变菌株UV6NTP4与出发菌株生长谱鉴定 | 第70页 |
| ·结果与分析 | 第70-77页 |
| ·紫外线(UV)单因素诱变结果 | 第70-71页 |
| ·亚硝基胍(NTP)诱变处理 | 第71-72页 |
| ·紫外—亚硝基胍复合诱变筛选辅酶Q_(10)高产菌株 | 第72-75页 |
| ·突变菌株UV6NTP4与出发菌株辅酶Q_(10)的发酵单位比较 | 第75页 |
| ·辅酶Q_(10)高产菌株UV6NTP4的遗传稳定性实验 | 第75-76页 |
| ·辅酶Q_(10)高产菌株UV6NTP4与出发菌株生长谱比较 | 第76-77页 |
| ·小结 | 第77-78页 |
| 第6章 结论与展望 | 第78-80页 |
| ·结论 | 第78-79页 |
| ·研究展望 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-86页 |
| 附录 主要缩略语表 | 第86-87页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第87页 |
