摘要 | 第5-7页 |
ABSTRACT | 第7-8页 |
英文缩略词表 | 第12-14页 |
第一章 绪论 | 第14-29页 |
1.1 概述 | 第14-16页 |
1.2 食蟹猴和中国恒河猴简介及生物学研究应用概况 | 第16-18页 |
1.2.1 食蟹猴简介及生物学研究应用概况 | 第16-17页 |
1.2.2 中国恒河猴简介及生物学研究应用概况 | 第17-18页 |
1.3 TRIM5α 及其基因多态性 | 第18-27页 |
1.3.1 TRIM5α 分子的来源、结构及功能 | 第18-22页 |
1.3.2 TRIM5α 限制HIV复制的机制 | 第22-26页 |
1.3.3 TRIM5α 基因多态性研究进展 | 第26-27页 |
1.4 技术路线、研究内容和意义 | 第27-29页 |
1.4.1 技术路线 | 第27-28页 |
1.4.2 研究内容 | 第28页 |
1.4.3 研究意义 | 第28-29页 |
第二章 食蟹猴和中国恒河猴TRIM5α 基因多态性研究 | 第29-48页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验材料与仪器设备 | 第30-32页 |
2.2.1 实验样本 | 第30页 |
2.2.2 实验仪器设备 | 第30-31页 |
2.2.3 实验试剂和耗材 | 第31-32页 |
2.3 实验过程和方法 | 第32-35页 |
2.3.1 外周血的采集 | 第32页 |
2.3.2 血液DNA提取 | 第32-33页 |
2.3.3 引物设计 | 第33页 |
2.3.4 PCR扩增 | 第33-34页 |
2.3.5 PCR产物电泳 | 第34页 |
2.3.6 PCR产物测序 | 第34页 |
2.3.7 TRIM5α 基因多态性统计与及分析 | 第34-35页 |
2.4 实验结果与讨论 | 第35-45页 |
2.4.1 PCR电泳结果 | 第35-38页 |
2.4.2 食蟹猴TRIM5α 等位基因多态性分析 | 第38-40页 |
2.4.3 中国恒河猴TRIM5α 等位基因多态性分析 | 第40-43页 |
2.4.4 食蟹猴和中国恒河猴TRIM5α 等位基因多态性比较 | 第43-45页 |
2.5 本章小结 | 第45-48页 |
第三章 食蟹猴和中国恒河猴TRIM5α 基因多态性与HIV-2/SIV易感性研究 | 第48-74页 |
3.1 引言 | 第48-49页 |
3.2 实验材料与仪器设备 | 第49-53页 |
3.2.1 实验样本 | 第49页 |
3.2.2 实验仪器与设备 | 第49-50页 |
3.2.3 实验试剂与耗材 | 第50-52页 |
3.2.4 实验试剂的配制 | 第52-53页 |
3.3 实验过程与方法 | 第53-61页 |
3.3.1 特定TRIM5α 基因型食蟹猴和中国恒河猴实验个体PBMC的分离 | 第53-54页 |
3.3.2 实验个体细胞的冻存和运输 | 第54-55页 |
3.3.3 SIVmac 239 和HIV-2_(ROD)病毒培养 | 第55页 |
3.3.4 HIV-2_(ROD)/SIVmac239 分别感染特定TRIM5α 基因型食蟹猴和中国恒河猴实验个体PBMC | 第55-56页 |
3.3.5 SIV-p27 ELISA试剂盒检测SIV p27 抗原浓度 | 第56-61页 |
3.3.6 SIV-p27 ELISA试剂盒检测HIV-2 p27 抗原浓度 | 第61页 |
3.3.7 食蟹猴和中国恒河猴TRIM5α 不同等位基因与HIV-2/SIV易感性关联分析 | 第61页 |
3.4 实验结果 | 第61-71页 |
3.4.1 实验个体PBMC分离结果 | 第61-63页 |
3.4.2 HIV-2_(ROD)和SIVmac239 毒株培养结果 | 第63-64页 |
3.4.3 实验个体PBMC活化结果 | 第64页 |
3.4.4 实验个体不同时间点培养上清中p27 抗原浓度检测结果 | 第64-65页 |
3.4.5 食蟹猴TRIM5α 不同等位基因与HIV-2/SIV易感性关联分析 | 第65-66页 |
3.4.6 中国恒河猴TRIM5α 不同等位基因与HIV-2/SIV易感性关联分析 | 第66-70页 |
3.4.7 食蟹猴和中国恒河猴TRIM5α 不同等位基因与HIV-2/SIV易感性比较 | 第70-71页 |
3.5 本章小结 | 第71-74页 |
结论与展望 | 第74-77页 |
参考文献 | 第77-87页 |
附录 | 第87-96页 |
攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第96-97页 |
致谢 | 第97-99页 |
附件 | 第99页 |