| 前言 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第19-31页 |
| 1.1 趋化因子 | 第19页 |
| 1.2 CXCL10和CXCR3基本结构 | 第19-22页 |
| 1.3 CXCL10和CXCR3在肾脏固有细胞中的表达 | 第22-24页 |
| 1.3.1 系膜细胞 | 第22-23页 |
| 1.3.2 肾小管上皮细胞 | 第23页 |
| 1.3.3 足细胞 | 第23页 |
| 1.3.4 内皮细胞 | 第23-24页 |
| 1.4 CXCL10在肾脏疾病中的作用 | 第24-30页 |
| 1.4.1 系膜增生性肾小球肾炎 | 第24-25页 |
| 1.4.2 急性肾损伤 | 第25-26页 |
| 1.4.3 狼疮性肾炎 | 第26-28页 |
| 1.4.4 肾脏移植排斥 | 第28-29页 |
| 1.4.5 抗病毒反应 | 第29-30页 |
| 1.5 总结 | 第30-31页 |
| 第2章 利用CXCL10敲除鼠建立系膜增生性肾炎模型 | 第31-58页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第31页 |
| 2.1.2 主要仪器设备及耗材 | 第31-32页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-41页 |
| 2.2.1 Cxcl10~(-/-)小鼠的鉴定 | 第33-34页 |
| 2.2.2 HSV诱导系膜增生性肾炎（Habu肾炎）模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.2.3 标本的留取 | 第35页 |
| 2.2.4 血生化指标的检测 | 第35页 |
| 2.2.5 过碘酸-希夫氏染色 | 第35-36页 |
| 2.2.6 免疫组织化学染色 | 第36-37页 |
| 2.2.7 肾组织总蛋白的提取 | 第37页 |
| 2.2.8 组织蛋白印迹 | 第37-38页 |
| 2.2.9 肾皮质总RNA的提取及cDNA的合成 | 第38-39页 |
| 2.2.10 实时定量PCR | 第39-40页 |
| 2.2.11 肾小球硬化指数评分 | 第40-41页 |
| 2.2.12 统计学方法 | 第41页 |
| 2.3 实验结果 | 第41-53页 |
| 2.3.1 实验小鼠基因型的鉴定 | 第41-43页 |
| 2.3.2 Habu肾炎模型建立后一般情况观察 | 第43页 |
| 2.3.3 Habu模型建立后两组小鼠肾功能检测 | 第43-45页 |
| 2.3.4 CXCL10在Habu肾炎模型中的表达 | 第45-46页 |
| 2.3.5 Cxcl10~(+/+)和Cxcl10~(-/-)小鼠肾小球病理染色及统计分析 | 第46-49页 |
| 2.3.6 Cxcl10~(+/+)和Cxcl10~(-/-)小鼠肾小球PCNA的表达 | 第49-51页 |
| 2.3.7 Cxcl10~(+/+)和Cxcl10~(-/-)小鼠细胞周期相关蛋白的表达 | 第51-52页 |
| 2.3.8 Cxcl10~(+/+)和Cxcl10~(-/-)小鼠Erk1/2 信号通路相关蛋白的表达 | 第52-53页 |
| 2.4 讨论 | 第53-57页 |
| 2.5 小结 | 第57-58页 |
| 第3章 CXCL10影响系膜细胞增殖机制的研究 | 第58-75页 |
| 3.1 实验材料 | 第58-60页 |
| 3.1.1 主要仪器设备及耗材 | 第58-59页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第59-60页 |
| 3.2 实验方法 | 第60-64页 |
| 3.2.1 原代小鼠系膜细胞细胞（MRMC）的培养 | 第60-61页 |
| 3.2.2 细胞实验分组及相关处理 | 第61-62页 |
| 3.2.3 Edu摄取实验 | 第62页 |
| 3.2.4 免疫荧光检测增殖指标Ki67表达 | 第62-63页 |
| 3.2.5 划痕实验 | 第63页 |
| 3.2.6 Western blot法检测CXCL10对系膜细胞ERK1/2 信号通路相关蛋白表达水平的影响 | 第63-64页 |
| 3.3 实验结果 | 第64-72页 |
| 3.3.1 CXCL10对系膜细胞增殖能力的影响 | 第64-68页 |
| 3.3.2 CXCL10对系膜细胞迁移能力的影响 | 第68-70页 |
| 3.3.3 CXCL10对ERK1/2 通路分子表达的影响 | 第70页 |
| 3.3.4 抑制ERK1/2 通路对CXCL10调控系膜细胞增殖作用的影响 | 第70-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-75页 |
| 第4章 利用CXCL10敲除鼠建立单侧输尿管梗阻模型 | 第75-90页 |
| 4.1 实验材料 | 第75-76页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第75页 |
| 4.1.2 主要仪器设备及耗材 | 第75页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第75-76页 |
| 4.2 实验方法 | 第76-78页 |
| 4.2.1 单侧输尿管梗阻模型的建立 | 第76页 |
| 4.2.2 样本的留取 | 第76页 |
| 4.2.3 血生化检测 | 第76页 |
| 4.2.4 过碘酸-希夫氏染色 | 第76页 |
| 4.2.5 马松染色 | 第76-77页 |
| 4.2.6 天狼星红（Sirius Red）染色 | 第77页 |
| 4.2.7 肾组织Western blot | 第77页 |
| 4.2.8 统计学方法 | 第77-78页 |
| 4.3 实验结果 | 第78-87页 |
| 4.3.1 单侧输尿管梗阻术后一般情况观察 | 第78-79页 |
| 4.3.2 UUO模型建立后两组小鼠肾功能的改变 | 第79-80页 |
| 4.3.3 CXCL10在UUO模型中的表达 | 第80-82页 |
| 4.3.4 Cxcl10基因敲除后对小鼠UUO术后肾脏组织病理改变 | 第82-86页 |
| 4.3.5 Cxcl10~(+/+)和Cxcl10~(-/-)小鼠纤维化相关蛋白的表达 | 第86-87页 |
| 4.4 讨论 | 第87-89页 |
| 4.5 小结 | 第89-90页 |
| 第5章 全文结论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-110页 |
| 作者简介及在学期间获得的科研成果 | 第110-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
