| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 简写和全称对照表 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-16页 |
| 1.1 胆碱受体与原发性痛经 | 第10-11页 |
| 1.2 TLRs与原发性痛经 | 第11-12页 |
| 1.3 M受体与TLRs | 第12页 |
| 1.4 盐酸戊乙奎醚与原发性痛经 | 第12-13页 |
| 1.5 本课题的研究内容和主要创新点 | 第13-16页 |
| 第二章 盐酸戊乙奎醚对大鼠离体子宫M受体密度的影响 | 第16-20页 |
| 2.1 实验材料 | 第16页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第16页 |
| 2.1.2 实验仪器与设备 | 第16页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-17页 |
| 2.2.1 分组与离体子宫实验 | 第16-17页 |
| 2.2.2 蛋白制备 | 第17页 |
| 2.2.3 M受体密度测定 | 第17页 |
| 2.3 统计学方法 | 第17页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第17-19页 |
| 2.4.1 盐酸戊乙奎醚对大鼠离体子宫中M受体密度的影响 | 第17-19页 |
| 2.5 小结 | 第19-20页 |
| 第三章 盐酸戊乙奎醚对原发性痛经模型大鼠作用机制研究 | 第20-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第20页 |
| 3.1.2 实验仪器与设备 | 第20-21页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第21页 |
| 3.2 实验方法 | 第21-30页 |
| 3.2.1 分组给药与原发性痛经模型造模 | 第21页 |
| 3.2.2 扭体评分与标本采集 | 第21-22页 |
| 3.2.3 子宫组织石蜡包埋切片 | 第22页 |
| 3.2.4 HE染色与病理学分析 | 第22-23页 |
| 3.2.5 Real-time PCR法测定子宫组织M_3、TLR3、TLR4 mRNA表达水平 | 第23-27页 |
| 3.2.6 Western blot法测定子宫组织M_3、TLR3、TLR4蛋白表达水平 | 第27-29页 |
| 3.2.7 ELISA检测子宫组织cAMP的含量 | 第29-30页 |
| 3.2.8 钙测定试剂盒检测子宫组织Ca~(2+)的含量 | 第30页 |
| 3.3 统计学方法 | 第30页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第30-39页 |
| 3.4.1 盐酸戊乙奎醚改善原发性痛经大鼠扭体评分 | 第30-31页 |
| 3.4.2 盐酸戊乙奎醚对原发性痛经大鼠子宫病理变化的影响 | 第31-32页 |
| 3.4.3 盐酸戊乙奎醚下调原发性痛经大鼠子宫组织M_3、TLR3和TLR4mRNA的表达 | 第32-34页 |
| 3.4.4 盐酸戊乙奎醚下调原发性痛经大鼠子宫组织M_3、TLR3与TLR4蛋白的表达 | 第34-36页 |
| 3.4.5 盐酸戊乙奎醚对M_3下游Ca~(2+)水平的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.6 盐酸戊乙奎醚对M_2下游cAMP水平的影响 | 第37-39页 |
| 3.5 小结 | 第39-40页 |
| 第四章 盐酸戊乙奎醚对大鼠子宫平滑肌细胞内Ca~(2+)的影响 | 第40-45页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第40页 |
| 4.1.2 实验仪器与设备 | 第40页 |
| 4.1.3 实验动物 | 第40-41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-42页 |
| 4.2.1 大鼠子宫平滑肌细胞培养 | 第41页 |
| 4.2.2 大鼠子宫平滑肌细胞内Ca~(2+)的测定 | 第41-42页 |
| 4.3 统计学方法 | 第42页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第42-44页 |
| 4.4.1 盐酸戊乙奎醚对大鼠子宫平滑肌细胞内Ca~(2+)的影响 | 第42-44页 |
| 4.5 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 全文总结与展望 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 攻读硕士学位期间取得的成果 | 第53页 |
