| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 根皮素的研究进展 | 第10-12页 |
| 1.1.1 根皮素 | 第10页 |
| 1.1.2 根皮素的生物活性 | 第10-12页 |
| 1.2 血管内皮系统的失调及内皮细胞 | 第12-13页 |
| 1.3 肝损伤的机理 | 第13-15页 |
| 1.4 胆碱及TMAO | 第15-18页 |
| 1.5 本文研究意义及工作内容 | 第18-20页 |
| 第2章 根皮素对高浓度胆碱导致的小鼠血管内皮功能失调和肝损伤的保护作用 | 第20-38页 |
| 2.1 引言 | 第20-21页 |
| 2.2 材料及试剂仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 材料 | 第21页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.3 动物 | 第22页 |
| 2.2.4 药品与试剂 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-25页 |
| 2.3.1 小鼠分组与给药 | 第22-23页 |
| 2.3.2 小鼠体重的测定 | 第23页 |
| 2.3.3 小鼠血清中内皮系统指标含量水平的测定 | 第23页 |
| 2.3.4 小鼠血清中血脂和肝功能的检测 | 第23-24页 |
| 2.3.5 小鼠肝组织生化指标的测定 | 第24页 |
| 2.3.6 小鼠肝组织病理学分析 | 第24-25页 |
| 2.3.7 统计学分析 | 第25页 |
| 2.4 试验结果与讨论 | 第25-37页 |
| 2.4.1 小鼠体重的测定结果 | 第25-26页 |
| 2.4.2 血清中ET-1和NO含量测定结果 | 第26-28页 |
| 2.4.3 血清中TXB2和6-keto-PGF1α含量测定结果 | 第28-29页 |
| 2.4.4 血清中HDL,LDL,TC和TG含量测定结果 | 第29-31页 |
| 2.4.5 血清中AST和ALT酶活性测定结果 | 第31-32页 |
| 2.4.6 肝脏中MDA和NEFA含量测定结果 | 第32-33页 |
| 2.4.7 肝组织SOD和GSH-Px酶活力测定结果 | 第33-34页 |
| 2.4.8 肝脏组织病理切片分析结果 | 第34-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第3章 根皮素对TMAO诱导的HUVEC细胞损伤的保护作用 | 第38-56页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 材料与试验仪器 | 第39-41页 |
| 3.2.1 材料 | 第39页 |
| 3.2.2 试验仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.3 药品与试剂 | 第40页 |
| 3.2.4 试剂的配制 | 第40-41页 |
| 3.3 试验方法 | 第41-44页 |
| 3.3.1 细胞的培养 | 第41页 |
| 3.3.2 细胞的复苏 | 第41-42页 |
| 3.3.3 细胞的传代 | 第42页 |
| 3.3.4 MTT比色法测定根皮素对细胞作用 | 第42页 |
| 3.3.5 TMAO损伤HUVEC模型的建立 | 第42-43页 |
| 3.3.6 细胞培养上清液中NO的检测 | 第43页 |
| 3.3.7 细胞培养上清液中ET-1的检测 | 第43页 |
| 3.3.8 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第43-44页 |
| 3.3.9 DAPI染色法观察药物对HUVEC形态的影响 | 第44页 |
| 3.3.10 数据统计与处理 | 第44页 |
| 3.4 试验结果与分析 | 第44-53页 |
| 3.4.1 根皮素对HUVEC存活率的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.2 TMAO损伤HUVEC模型的建立 | 第45-46页 |
| 3.4.3 根皮素对TMAO培养的HUVEC上清液中NO,ET-1含量的影响 | 第46-48页 |
| 3.4.4 根皮素对TMAO培养的HUVEC凋亡率的影响 | 第48-51页 |
| 3.4.5 细胞形态学分析 | 第51-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-56页 |
| 第4章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第73页 |
