摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
目录 | 第6-9页 |
英文缩略词表 | 第9-11页 |
1 绪论 | 第11-13页 |
2 宿主DC与供体DC的动力学研究 | 第13-31页 |
2.1 方法与材料 | 第13-26页 |
2.1.1 实验动物 | 第13-14页 |
2.1.2 移植手术 | 第14-16页 |
2.1.3 主要试剂 | 第16-19页 |
2.1.4 主要仪器 | 第19-21页 |
2.1.5 流式细胞样品准备及染色 | 第21-24页 |
2.1.6 光子活体显微镜(2PIM)检测 | 第24-25页 |
2.1.7 数据分析与统计学方法 | 第25-26页 |
2.2 结果 | 第26-30页 |
2.2.1 心脏移植模型 | 第26-28页 |
2.2.2 肾脏移植模型 | 第28-29页 |
2.2.3 免疫抑制药物(环保霉素A)对上述现象的影响 | 第29-30页 |
2.3 小结 | 第30-31页 |
3 宿主DC来源的研究 | 第31-47页 |
3.1 方法与材料 | 第31-44页 |
3.1.1 实验动物 | 第31-32页 |
3.1.2 移植手术 | 第32-34页 |
3.1.3 主要试剂 | 第34-37页 |
3.1.4 主要仪器 | 第37-38页 |
3.1.5 流式细胞样品准备及染色 | 第38-42页 |
3.1.6 光子活体显微镜(2PIM)检测 | 第42-43页 |
3.1.7 数据分析与统计学方法 | 第43-44页 |
3.2 结果 | 第44-46页 |
3.2.1 心脏移植模型 | 第44-45页 |
3.2.2 肾脏移植模型 | 第45-46页 |
3.3 小结 | 第46-47页 |
4 宿主Mono-DC迁入移植器官机制的研究 | 第47-65页 |
4.1 方法与材料 | 第47-61页 |
4.1.1 实验动物 | 第47-48页 |
4.1.2 移植手术 | 第48-50页 |
4.1.3 主要试剂 | 第50-53页 |
4.1.4 主要仪器 | 第53-54页 |
4.1.5 流式细胞样品准备及染色 | 第54-57页 |
4.1.6 光子活体显微镜(2PIM)检测 | 第57-59页 |
4.1.7 骨髓嵌合体模型的建立 | 第59-60页 |
4.1.8 数据分析与统计学方法 | 第60-61页 |
4.2 结果 | 第61-64页 |
4.2.1 骨髓嵌合体受体小鼠细胞重建效果 | 第61-62页 |
4.2.2 心脏移植模型中两种单核细胞迁入移植器官的竞争情况 | 第62-63页 |
4.2.3 肾脏移植模型中两种单核细胞迁入移植器官的竞争情况 | 第63-64页 |
4.3 小结 | 第64-65页 |
5 宿主Mono-DC功能的研究 | 第65-86页 |
5.1 方法与材料 | 第65-83页 |
5.1.1 实验动物 | 第65-66页 |
5.1.2 移植手术 | 第66-67页 |
5.1.3 主要试剂 | 第67-70页 |
5.1.4 主要仪器 | 第70-72页 |
5.1.5 流式细胞样品准备及染色 | 第72-76页 |
5.1.6 双光子活体显微镜(2PIM)检测 | 第76-77页 |
5.1.7 骨髓嵌合体模型的建立 | 第77页 |
5.1.8 树突状细胞(DC)培养 | 第77-79页 |
5.1.9 效应T细胞制备 | 第79-81页 |
5.1.10 效应T细胞荧光标记 | 第81-82页 |
5.1.11 数据分析与统计学方法 | 第82-83页 |
5.2 结果 | 第83-85页 |
5.2.1 骨髓嵌合体受体小鼠细胞重建效果 | 第83页 |
5.2.2 肾脏移植模型中两种DC与特异性Teff之间的相互作用 | 第83-84页 |
5.2.3 宿主Mono-DC帮助Teff从移植肾脏血管中迁出到组织中 | 第84-85页 |
5.3 小结 | 第85-86页 |
6 讨论 | 第86-91页 |
7 结论 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-97页 |
文献综述 | 第97-119页 |
8.1 前言 | 第97-98页 |
8.2 哪种DC在肾移植免疫反应中起到了主导作用? | 第98-101页 |
8.3 是什么激活了宿主DC? | 第101-104页 |
8.4 其他固有免疫细胞 | 第104-106页 |
8.5 总结 | 第106-107页 |
参考文献 | 第107-119页 |
致谢 | 第119-121页 |
攻读博士学位期间的研究成果 | 第121-122页 |