桑树组培快速繁育、脱毒及原生质体分离技术的研究
| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 引言 | 第13-26页 |
| 1 植物组织培养的研究进展 | 第13-18页 |
| ·植物组织培养及影响因素 | 第13页 |
| ·原生质体培养及植株再生 | 第13-18页 |
| ·植物原生质体培养概况 | 第14-15页 |
| ·原生质体材料的来源 | 第15页 |
| ·原生质体的分离 | 第15-16页 |
| ·原生质体培养基 | 第16页 |
| ·原生质体培养方法 | 第16-17页 |
| ·原生质体再生植株 | 第17-18页 |
| 2 桑树组织培养研究进展 | 第18-22页 |
| ·桑的茎尖培养 | 第18-20页 |
| ·桑的愈伤组织培养 | 第20页 |
| ·花药与胚培养 | 第20-21页 |
| ·原生质体培养 | 第21页 |
| ·叶片培养 | 第21-22页 |
| 3 植物脱毒研究进展 | 第22-24页 |
| ·脱毒苗培育 | 第22-23页 |
| ·脱毒方法 | 第23-24页 |
| ·茎尖培养脱毒 | 第23页 |
| ·化学处理 | 第23-24页 |
| ·热处理 | 第24页 |
| ·愈伤组织培养脱毒 | 第24页 |
| 4. 本研究的目的和意义 | 第24-26页 |
| 第一章 桑树快速繁育的研究 | 第26-41页 |
| 1. 材料与方法 | 第27-32页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·外植体 | 第27页 |
| ·培养基 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-31页 |
| ·无菌体系的建立 | 第27-28页 |
| ·培养基的筛选 | 第28页 |
| ·不同激素对桑组培苗生长的影响 | 第28-29页 |
| ·启动培养基的优化 | 第29-30页 |
| ·分化培养基的筛选 | 第30-31页 |
| ·生根培养基的筛选 | 第31页 |
| ·数据统计 | 第31-32页 |
| ·统计分析指标 | 第31页 |
| ·具体统计方法 | 第31-32页 |
| ·分析方法 | 第32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-38页 |
| ·无菌体系的建立 | 第32-34页 |
| ·消毒剂对桑树无菌体系建立的影响 | 第32-33页 |
| ·氯化汞处理时间的影响 | 第33-34页 |
| ·培养基的筛选 | 第34-35页 |
| ·激素的筛选 | 第35页 |
| ·启动培养基的筛选 | 第35-36页 |
| ·分化培养基的筛选 | 第36-37页 |
| ·生根培养基的筛选 | 第37-38页 |
| 3 小结与讨论 | 第38-41页 |
| ·消毒方式和消毒时间筛选 | 第38页 |
| ·培养基筛选 | 第38-39页 |
| ·激素筛选 | 第39页 |
| ·启动培养基筛选 | 第39页 |
| ·分化培养基筛选 | 第39-40页 |
| ·生根培养基筛选 | 第40-41页 |
| 第二章 桑树组培苗脱毒效果影响因素的研究 | 第41-53页 |
| 1. 材料与方法 | 第41-45页 |
| ·材料 | 第41-42页 |
| ·供试材料 | 第41页 |
| ·培养基成份 | 第41-42页 |
| ·试验用仪器 | 第42页 |
| ·方法 | 第42-44页 |
| ·影响桑树脱毒效果的因子 | 第42-43页 |
| ·脱毒效果的检测 | 第43-44页 |
| ·培养室环境条件 | 第44页 |
| ·数据统计分析 | 第44-45页 |
| ·统计分析指标 | 第44页 |
| ·具体统计方法 | 第44-45页 |
| 2. 结果与分析 | 第45-50页 |
| ·培养温度对桑树脱毒效果的影响 | 第45-46页 |
| ·茎尖大小对桑树脱毒效果的影响 | 第46页 |
| ·光照条件对桑树脱毒效果的影响 | 第46-47页 |
| ·活性炭对桑树脱毒效果的影响 | 第47-48页 |
| ·不同培养基对桑树脱毒效果的影响 | 第48页 |
| ·二次茎尖脱毒培养对桑茎尖诱导分化的影响 | 第48-50页 |
| ·脱毒效果目测检测结果 | 第50页 |
| 3 小结与讨论 | 第50-53页 |
| ·热处理对桑组培苗脱毒效果的影响 | 第50页 |
| ·茎尖大小对脱毒效果的影响 | 第50-51页 |
| ·光照诱导茎尖分化 | 第51页 |
| ·活性炭对脱毒效果的影响 | 第51页 |
| ·不同激素配比培养基对脱毒效果的影响 | 第51页 |
| ·二次茎尖脱毒培养 | 第51-53页 |
| 第三章 原生质体分离技术的研究 | 第53-62页 |
| 1 材料与方法 | 第53-57页 |
| ·材料 | 第53-54页 |
| ·外植体 | 第53页 |
| ·试剂 | 第53页 |
| ·仪器 | 第53-54页 |
| ·培养基及所配溶液 | 第54页 |
| ·CPW-9M 溶液 | 第54页 |
| ·CPW-9M 酶液 | 第54页 |
| ·CPW-18S 溶液 | 第54页 |
| ·FDA 溶液 | 第54页 |
| ·方法 | 第54-57页 |
| ·原生质体分离过程中的预处理方法 | 第54-55页 |
| ·原生质体的分离方法 | 第55页 |
| ·不同酶液配比对原生质体产生的影响 | 第55-56页 |
| ·评价原生质体的指标体系 | 第56-57页 |
| ·原生质体培养 | 第57页 |
| 2 结果与分析 | 第57-59页 |
| ·叶片预处理对原生质体的影响 | 第57-58页 |
| ·不同酶液配比对原生质体产量及活力的影响 | 第58页 |
| ·不同酶解时间对原生质体产量和活力的影响 | 第58-59页 |
| 3 小结与讨论 | 第59-62页 |
| ·黑暗处理的影响 | 第59-60页 |
| ·低温处理的影响 | 第60页 |
| ·不同酶液配比的影响 | 第60页 |
| ·酶解时间的影响 | 第60-61页 |
| ·原生质体培养 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读硕士研究生期间公开发表的论文 | 第72页 |
