| 摘要 | 第2-4页 |
| SUMMARY | 第4-6页 |
| 缩略词表 | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-21页 |
| 1 外周神经缺损的现状 | 第12页 |
| 2 神经修复的研究发展 | 第12-18页 |
| 2.1 显微外科手术修复神经缺损 | 第12-13页 |
| 2.2 神经移植术修复神经缺损 | 第13页 |
| 2.2.1 自体神经移植术 | 第13页 |
| 2.2.2 异体神经移植术 | 第13页 |
| 2.3 组织工程学修复神经缺损 | 第13-18页 |
| 2.3.1 生物材料支架 | 第14-15页 |
| 2.3.2 种子细胞 | 第15-17页 |
| 2.3.2.1 施旺细胞 | 第15-16页 |
| 2.3.2.2 骨髓间充质干细胞 | 第16页 |
| 2.3.2.3 脂肪干细胞 | 第16-17页 |
| 2.3.2.4 神经干细胞 | 第17页 |
| 2.3.2.5 胚胎干细胞 | 第17页 |
| 2.3.3 辅助因子 | 第17-18页 |
| 3. 神经导管的发展进程 | 第18-21页 |
| 第二章 神经导管的构建与性能评价 | 第21-31页 |
| 1 前言 | 第21-22页 |
| 2 实验材料 | 第22页 |
| 2.1 实验的主要试剂及主要溶液配制方法 | 第22页 |
| 2.1.1 实验的主要试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 主要溶液配制方法（见附录二） | 第22页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第22页 |
| 3 实验方法 | 第22-26页 |
| 3.1 神经导管的构建 | 第22-24页 |
| 3.1.1 红景天苷微球的制备 | 第22-23页 |
| 3.1.2 神经导管壳层的制备 | 第23页 |
| 3.1.3 导管芯层的制备 | 第23页 |
| 3.1.4 合成神经导管并京尼平交联 | 第23-24页 |
| 3.2 神经导管的性能评价 | 第24-25页 |
| 3.2.1 红景天苷微球缓释的测定 | 第24-25页 |
| 3.2.2 纳米纤维神经导管壳层表面接触角的测定 | 第25页 |
| 3.2.3 纳米纤维神经导管壳层力学性能测试 | 第25页 |
| 3.2.4 纳米纤维神经导管壳层透气性的检测 | 第25页 |
| 3.2.5 导管芯层质量吸水率的测定 | 第25页 |
| 3.3 统计分析 | 第25-26页 |
| 4 实验结果 | 第26-29页 |
| 4.1 扫描电镜材料的表观特征 | 第26-27页 |
| 4.2 红景天苷微球的缓释效果 | 第27-28页 |
| 4.3 纳米纤维神经导管壳层的表面接触角 | 第28页 |
| 4.4 纳米纤维神经导管壳层的力学性能 | 第28-29页 |
| 4.5 纳米纤维神经导管壳层的透气性 | 第29页 |
| 4.6 导管芯层质量吸水率 | 第29页 |
| 5 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 材料与大鼠BMSCS相互作用的研究 | 第31-42页 |
| 1 前言 | 第31页 |
| 2 实验材料 | 第31-32页 |
| 2.1 实验动物 | 第31页 |
| 2.2 实验的主要试剂及主要溶液配制方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 实验的主要试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.2 主要溶液配制方法（见附录二） | 第32页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第32页 |
| 3 实验方法 | 第32-36页 |
| 3.1 材料的制备 | 第32页 |
| 3.2 BMSCs的提取、培养及鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3 BMSCs与材料的生物相容性 | 第33-36页 |
| 3.3.1 细胞与材料的黏附性 | 第33页 |
| 3.3.2 CCK-8 法测细胞在材料上的增殖 | 第33-34页 |
| 3.3.3 细胞在材料上的生长及检测 | 第34-36页 |
| 3.4 统计分析 | 第36页 |
| 4 实验结果 | 第36-39页 |
| 4.1 BMSCs的鉴定 | 第36-37页 |
| 4.2 材料的表征及黏附性 | 第37-38页 |
| 4.3 细胞在材料上的增殖 | 第38-39页 |
| 4.4 神经相关标志分子的表达 | 第39页 |
| 5 讨论 | 第39-42页 |
| 第四章 复合红景天苷微球神经导管修复坐骨神经缺损的初步研究 | 第42-56页 |
| 1 前言 | 第42-43页 |
| 2 实验材料 | 第43-44页 |
| 2.1 实验动物 | 第43页 |
| 2.2 实验的主要试剂及主要溶液配制方法 | 第43页 |
| 2.2.1 实验的主要试剂 | 第43页 |
| 2.2.2 主要溶液配制方法（见附录二） | 第43页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第43-44页 |
| 3 实验方法 | 第44-46页 |
| 3.1 手术操作过程（见图 4-1）： | 第44页 |
| 3.2 大鼠足迹及坐骨神经功能指数的测定 | 第44-45页 |
| 3.2.1 大鼠术后三个月采集大鼠的足迹 | 第44-45页 |
| 3.2.2 大鼠坐骨神经功能指数（sciatic functional index，SFI）测定 | 第45页 |
| 3.3 电生理检测 | 第45页 |
| 3.4 组织学检查 | 第45-46页 |
| 3.5 统计分析 | 第46页 |
| 4 实验结果 | 第46-51页 |
| 4.1 一般观察 | 第46-47页 |
| 4.2 大鼠足迹及坐骨神经功能指数的测定 | 第47-48页 |
| 4.3 电生理检测 | 第48-50页 |
| 4.4 组织学检查 | 第50-51页 |
| 5 讨论 | 第51-56页 |
| 第五章 结论与展望 | 第56-58页 |
| 1 结论 | 第56页 |
| 2 不足与展望 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 附录一 | 第66-67页 |
| 附录二 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69-70页 |
| 导师简介 | 第70-72页 |