| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第15-28页 |
| 1 微生物多糖的研究概况 | 第16-20页 |
| 1.1 微生物多糖的分类 | 第16-17页 |
| 1.2 微生物胞外多糖的来源 | 第17页 |
| 1.3 原核生物胞外多糖的生物合成和应用 | 第17-19页 |
| 1.3.1 黄原胶的生物合成和生理功能 | 第17-18页 |
| 1.3.2 果聚糖的生物合成和应用 | 第18-19页 |
| 1.4 真核生物胞外多糖的生物合成和应用 | 第19-20页 |
| 1.4.1 普鲁兰多糖的生物合成和应用 | 第19页 |
| 1.4.2 小核菌葡聚糖的生物合成和应用 | 第19-20页 |
| 2 海洋微生物胞外多糖的研究 | 第20-25页 |
| 2.1 海洋环境的特殊性及海洋微生物种类的多样性 | 第20-21页 |
| 2.2 红树林生态系统胞外多糖的研究 | 第21页 |
| 2.3 海洋微生物胞外多糖的结构研究 | 第21-22页 |
| 2.4 多糖结构的研究方法 | 第22-25页 |
| 2.4.1 多糖的分离提取和纯化 | 第22-23页 |
| 2.4.2 多糖的纯度分析和分子量分析 | 第23页 |
| 2.4.3 多糖的单糖组成分析 | 第23页 |
| 2.4.4 多糖的红外光谱分析 | 第23-24页 |
| 2.4.5 多糖的甲基化分析 | 第24页 |
| 2.4.6 多糖的核磁共振(NMR)分析 | 第24-25页 |
| 2.4.7 多糖高级结构的研究 | 第25页 |
| 3 微生物多糖的生物活性 | 第25-27页 |
| 3.1 微生物多糖的免疫调节与抗肿瘤活性 | 第26页 |
| 3.2 微生物多糖的抗氧化活性 | 第26页 |
| 3.3 微生物多糖的抗病毒活性 | 第26-27页 |
| 4 本课题的研究背景和意义 | 第27-28页 |
| 第一章 三株海洋红树林真菌产胞外多糖的化学组成及结构研究 | 第28-52页 |
| 1 引言 | 第28页 |
| 2 材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.1 实验原料 | 第28页 |
| 2.2 实验材料 | 第28-29页 |
| 2.3 实验仪器 | 第29页 |
| 3 实验方法 | 第29-36页 |
| 3.1 胞外多糖的提取 | 第29-31页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第31页 |
| 3.2.1 离子交换柱层析 | 第31页 |
| 3.2.2 凝胶渗透柱层析 | 第31页 |
| 3.3 胞外多糖的理化性质分析 | 第31-34页 |
| 3.3.1 总糖含量测定 | 第31-32页 |
| 3.3.2 蛋白含量测定 | 第32页 |
| 3.3.3 氨基糖含量测定 | 第32-33页 |
| 3.3.4 糖醛酸含量测定 | 第33页 |
| 3.3.5 硫酸根含量测定 | 第33-34页 |
| 3.4 纯度和分子量分析 | 第34页 |
| 3.5 单糖组成分析 | 第34-35页 |
| 3.6 红外光谱分析 | 第35页 |
| 3.7 甲基化分析 | 第35-36页 |
| 4. 结果与讨论 | 第36-51页 |
| 4.1 胞外多糖的提取与分离 | 第36-38页 |
| 4.2 胞外多糖的纯化 | 第38-40页 |
| 4.3 胞外多糖的化学组成 | 第40-43页 |
| 4.4 胞外多糖的纯度和分子量分析 | 第43-46页 |
| 4.5 胞外多糖的单糖组成分析 | 第46-48页 |
| 4.6 胞外多糖的红外光谱分析 | 第48-49页 |
| 4.7 胞外多糖的甲基化分析 | 第49-51页 |
| 5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第二章 梭鱼内脏共附生土曲霉（ Aspergillus terreus OUCMDZ-1925）产胞外多糖的结构研究 | 第52-73页 |
| 1 引言 | 第52页 |
| 2 材料与仪器 | 第52-53页 |
| 2.1 实验原料 | 第52页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第52-53页 |
| 2.3 实验仪器 | 第53页 |
| 3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.1 胞外多糖的提取和分离 | 第53页 |
| 3.2 胞外多糖的纯化 | 第53页 |
| 3.3 胞外多糖化学组成分析 | 第53页 |
| 3.4 纯度和分子量分析 | 第53-54页 |
| 3.5 单糖组成分析 | 第54页 |
| 3.6 红外光谱分析 | 第54页 |
| 3.7 部分酸水解 | 第54页 |
| 3.8 甲基化分析 | 第54页 |
| 3.9 核磁共振波谱(NMR)分析 | 第54-55页 |
| 4 结果与讨论 | 第55-72页 |
| 4.1 胞外多糖的提取与分离 | 第55页 |
| 4.2 胞外多糖的纯化 | 第55-56页 |
| 4.3 胞外多糖的化学组成 | 第56-57页 |
| 4.4 胞外多糖的纯度和分子量 | 第57-58页 |
| 4.5 胞外多糖的单糖组成 | 第58-59页 |
| 4.6 胞外多糖的红外光谱 | 第59-60页 |
| 4.7 胞外多糖的甲基化 | 第60-66页 |
| 4.7.1 甲基化的原理 | 第60-62页 |
| 4.7.2 样品yss和yss-p的甲基化分析 | 第62-66页 |
| 4.8 胞外多糖的核磁共振（NMR）分析 | 第66-72页 |
| 5 本章小结 | 第72-73页 |
| 第三章 海南文昌红树林根泥共附生青霉菌（Penicillium sp.H-25-02）产胞外多糖的结构研究 | 第73-89页 |
| 1 引言 | 第73页 |
| 2 材料与仪器 | 第73-74页 |
| 2.1 实验原料 | 第73-74页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第74页 |
| 2.3 实验仪器 | 第74页 |
| 3 实验方法 | 第74-75页 |
| 3.1 胞外多糖的提取 | 第74页 |
| 3.2 胞外多糖的分离纯化 | 第74页 |
| 3.3 化学组成的分析 | 第74页 |
| 3.4 纯度和分子量分析 | 第74-75页 |
| 3.5 单糖组成分析 | 第75页 |
| 3.6 红外光谱分析 | 第75页 |
| 3.7 多糖qs-2s的部分酸水解 | 第75页 |
| 3.8 甲基化分析 | 第75页 |
| 4 结果与讨论 | 第75-88页 |
| 4.1 胞外多糖的提取与分离 | 第75-76页 |
| 4.2 胞外多糖的纯化 | 第76-78页 |
| 4.3 胞外多糖的化学组成 | 第78-79页 |
| 4.4 胞外多糖的纯度和分子量 | 第79-80页 |
| 4.5 胞外多糖的单糖组成 | 第80-81页 |
| 4.6 胞外多糖的红外光谱 | 第81-82页 |
| 4.7 胞外多糖的甲基化 | 第82-88页 |
| 5 本章小结 | 第88-89页 |
| 第四章 胞外多糖的抗氧化活性测定 | 第89-98页 |
| 1 引言 | 第89-90页 |
| 2 材料与仪器 | 第90-91页 |
| 2.1 实验原料 | 第90页 |
| 2.2 实验试剂 | 第90页 |
| 2.3 实验仪器 | 第90-91页 |
| 3 实验方法 | 第91-92页 |
| 3.1 DPPH自由基清除活性 | 第91页 |
| 3.2 超氧阴离子自由基清除活性 | 第91-92页 |
| 3.3 羟基自由基清除活性 | 第92页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第92-97页 |
| 4.1 DPPH自由基清除活性 | 第92-94页 |
| 4.2 超氧阴离子自由基清除活性 | 第94-96页 |
| 4.3 羟基自由基清除活性 | 第96-97页 |
| 5 本章小结 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-107页 |
| 结语 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
| 发表文章 | 第110-111页 |
| 个人简历 | 第111-112页 |
