摘要 | 第8-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
缩略语表 | 第14-16页 |
第一章 文献综述 | 第16-28页 |
1.1 物理胁迫与昆虫响应 | 第16-23页 |
1.1.1 紫外线 | 第16-20页 |
1.1.2 低氧 | 第20-22页 |
1.1.3 电离辐射 | 第22-23页 |
1.2 害虫物理防治 | 第23-26页 |
1.2.1 基于UV的害虫物理防治技术 | 第24-25页 |
1.2.2 基于低氧的害虫物理防治技术 | 第25-26页 |
1.2.3 基于电离辐射的害虫物理防治技术 | 第26页 |
1.3 赤拟谷盗与四纹豆象简介 | 第26-27页 |
1.3.1 赤拟谷盗 | 第26-27页 |
1.3.2 四纹豆象 | 第27页 |
1.4 本研究的目的与意义 | 第27-28页 |
第二章 UVA对赤拟谷盗成虫产卵、存活及热激蛋白和细胞色素P450基因表达影响的研究 | 第28-44页 |
2.1 前言 | 第28页 |
2.2 材料和方法 | 第28-33页 |
2.2.1 供试昆虫 | 第28-29页 |
2.2.2 主要仪器和试剂 | 第29-30页 |
2.2.3 UVA对赤拟谷盗成虫产卵量和存活率影响的分析 | 第30-31页 |
2.2.4 UVA对赤拟谷盗成虫胁迫响应基因的表达模式影响的分析 | 第31-33页 |
2.2.5 DNA转录因子结合位点分析 | 第33页 |
2.2.6 数据分析 | 第33页 |
2.3 结果 | 第33-42页 |
2.3.1 UVA对赤拟谷盗成虫产卵和存活的影响 | 第33-34页 |
2.3.2 UVA对赤拟谷盗成虫热激蛋白基因(Hsp27、Hsp68和Hsp83)表达的影响 | 第34-35页 |
2.3.3 UVA对赤拟谷盗成虫P450基因(CYP6BQ4、CYP6BQ8、CYP6BQ10和CYP6BQ11)表达的影响 | 第35-37页 |
2.3.4 Hsp和P450基因潜在转录调控区域分析 | 第37-42页 |
2.4 讨论 | 第42-44页 |
第三章 UVB对赤拟谷盗末龄幼虫变态及蜕皮激素代谢影响的研究 | 第44-72页 |
3.1 前言 | 第44-45页 |
3.2 材料方法 | 第45-55页 |
3.2.1 供试昆虫 | 第45页 |
3.2.2 主要仪器和试剂 | 第45-46页 |
3.2.3 UVB对赤拟谷盗幼虫化蛹时间、死亡率、蛹长、蛹重和羽化率的影响分析 | 第46页 |
3.2.4 赤拟谷盗促前胸腺激素释放激素基因(Trcptth)全长cDNA的克隆 | 第46-47页 |
3.2.5 Trcptth基因生物信息学与系统发育分析 | 第47-48页 |
3.2.6 Trcptth基因RNA干扰 | 第48-49页 |
3.2.7 UVB胁迫下赤拟谷盗不同发育时期RT-qPCR内参基因的筛选 | 第49-52页 |
3.2.8 UVB对赤拟谷盗幼虫蜕皮激素代谢相关基因表达的影响分析 | 第52-54页 |
3.2.9 UVB处理后赤拟谷盗幼虫蜕皮激素含量测定 | 第54页 |
3.2.10 数据分析 | 第54-55页 |
3.3 结果 | 第55-69页 |
3.3.1 UVB对赤拟谷盗变态、幼虫死亡、蛹长、蛹重和羽化率的影响 | 第55-56页 |
3.3.2 赤拟谷盗Trcptth基因序列分析 | 第56-59页 |
3.3.3 Trcptth RNA干扰对赤拟谷盗变态的影响 | 第59-60页 |
3.3.4 UVB胁迫下赤拟谷盗不同发育时期RT-qPCR内参基因的筛选 | 第60-63页 |
3.3.5 UVB照射对Trcppth和蜕皮激素合成基因表达的影响 | 第63-66页 |
3.3.6 UVB照射对蜕皮激素滴度的影响 | 第66-67页 |
3.3.7 UVB照射对 20E和保幼激素(JH)响应基因表达的影响 | 第67-69页 |
3.4 讨论 | 第69-72页 |
第四章 UVB照射的赤拟谷盗幼虫数字基因表达谱的研究 | 第72-92页 |
4.1 前言 | 第72页 |
4.2 材料方法 | 第72-76页 |
4.2.1 供试昆虫 | 第72页 |
4.2.2 主要仪器与试剂 | 第72页 |
4.2.3 UVB处理 | 第72-73页 |
4.2.4 总RNA的提取和纯化 | 第73页 |
4.2.5 文库的制备和Illumina测序 | 第73-74页 |
4.2.6 基因的差异表达分析 | 第74-75页 |
4.2.7 DGE生物信息学分析 | 第75-76页 |
4.3 结果 | 第76-89页 |
4.3.1 读段(Reads)基本数据和与参考基因组比对情况统计 | 第76页 |
4.3.2 基因表达水平 | 第76-79页 |
4.3.3 重复样品相关性 | 第79-80页 |
4.3.4 差异表达基因筛选 | 第80-81页 |
4.3.5 差异表达基因GO富集 | 第81页 |
4.3.6 差异表达基因KEGG富集 | 第81-89页 |
4.4 讨论 | 第89-92页 |
第五章 低氧胁迫对四纹豆象亲代、F1代生长发育、生殖和低氧抗性影响的研究 | 第92-115页 |
5.1 前言 | 第92-93页 |
5.2 材料方法 | 第93-99页 |
5.2.1 供试昆虫 | 第93-94页 |
5.2.2 主要仪器与试剂 | 第94-95页 |
5.2.3 低氧对四纹豆象亲代影响的研究 | 第95-96页 |
5.2.4 低氧对四纹豆象F1代的影响 | 第96-98页 |
5.2.5 亲代四纹豆象经历低氧胁迫后F1代对低氧的抗性分析 | 第98页 |
5.2.6 数据分析 | 第98-99页 |
5.3 结果 | 第99-111页 |
5.3.1 低氧处理对亲代发育、羽化重量、性别比例和生殖的影响 | 第99-103页 |
5.3.2 亲代低氧处理对F1代发育、羽化率、性别比例和生殖的影响 | 第103-107页 |
5.3.3 亲代低氧处理后对F1代低氧抗性的影响 | 第107-111页 |
5.4 讨论 | 第111-115页 |
第六章 电子束辐照对四纹豆象生长发育和生殖影响的研究 | 第115-130页 |
6.1 前言 | 第115-116页 |
6.2 材料方法 | 第116-120页 |
6.2.1 供试昆虫 | 第116页 |
6.2.2 主要仪器与试剂 | 第116-117页 |
6.2.3 电子束照射和照射剂量测量 | 第117-118页 |
6.2.4 电子束对四纹豆象存活和寿命影响的分析 | 第118页 |
6.2.5 正反交试验 | 第118-119页 |
6.2.6 中肠蛋白水解酶活性测定 | 第119页 |
6.2.7 电子束对四纹豆象变态和卵巢发育影响的分析 | 第119页 |
6.2.8 数据分析 | 第119-120页 |
6.3 结果 | 第120-128页 |
6.3.1 电子束对四纹豆象发育的影响 | 第120-122页 |
6.3.2 电子束对四纹豆象幼虫蛋白水解酶活性和幼虫变态的影响 | 第122-124页 |
6.3.3 电子束对雌雄虫生殖力的影响 | 第124页 |
6.3.4 电子束对卵巢发育的影响 | 第124-128页 |
6.4 讨论 | 第128-130页 |
第七章 全文总结与展望 | 第130-133页 |
7.1 全文总结 | 第130-132页 |
7.2 创新点 | 第132页 |
7.3 展望 | 第132-133页 |
参考文献 | 第133-152页 |
博士期间已发表和待发表的论文 | 第152-154页 |
致谢 | 第154-156页 |