| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-25页 |
| 1.1 沿海湿地分布与CH_4排放 | 第10-13页 |
| 1.1.1 大气CH_4的来源 | 第10-11页 |
| 1.1.2 沿海湿地CH_4排放 | 第11-12页 |
| 1.1.3 沿海湿地的类型与分布 | 第12页 |
| 1.1.4 植被类型对沿海湿地CH_4排放的影响 | 第12-13页 |
| 1.2 湿地CH_4氧化途径与甲烷氧化菌 | 第13-20页 |
| 1.2.1 湿地CH_4的产生与氧化途径 | 第13-14页 |
| 1.2.2 甲烷氧化菌及甲烷单加氧酶和标记基因 | 第14-17页 |
| 1.2.3 自然湿地中甲烷氧化菌群落结构的研究 | 第17-18页 |
| 1.2.4 甲烷氧化菌群落结构的研究方法 | 第18-20页 |
| 1.3 植物入侵对土壤性质及微生物群落结构的影响 | 第20-25页 |
| 1.3.1 植物入侵的途径 | 第20页 |
| 1.3.2 植物入侵对土壤性质及微生物群落结构的影响 | 第20-21页 |
| 1.3.3 互花米草入侵对沿海湿地土壤性质和微生物群落结构的影响 | 第21-25页 |
| 第2章 研究背景和研究内容 | 第25-28页 |
| 2.1 研究背景 | 第25-26页 |
| 2.2 研究内容与技术路线 | 第26-28页 |
| 2.2.1 研究内容 | 第26页 |
| 2.2.2 研究目标 | 第26-27页 |
| 2.2.3 技术路线 | 第27页 |
| 2.2.4 拟解决的科学问题 | 第27-28页 |
| 第3章 不同入侵年限互花米草对沿海湿地表层土壤好氧甲烷氧化菌的影响 | 第28-42页 |
| 3.1 前言 | 第28-29页 |
| 3.2 材料与方法 | 第29-33页 |
| 3.2.1 研究区域概况 | 第29-30页 |
| 3.2.2 土壤样品采集和理化指标分析 | 第30页 |
| 3.2.3 甲烷氧化潜势测定 | 第30-31页 |
| 3.2.4 DNA提取 | 第31页 |
| 3.2.5 T-RFLP分析 | 第31-32页 |
| 3.2.6 pmoA功能基因克隆、测序和构建系统发育树 | 第32页 |
| 3.2.7 实时荧光定量PCR | 第32页 |
| 3.2.8 数据处理及分析 | 第32-33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-40页 |
| 3.3.1 土壤和植被性质 | 第33页 |
| 3.3.2 甲烷氧化潜势 | 第33-36页 |
| 3.3.3 细菌16S rRNA基因和甲烷氧化菌pmoA基因的丰度 | 第36-37页 |
| 3.3.4 甲烷氧化菌群落结构和多样性 | 第37-38页 |
| 3.3.5 pmoA基因克隆文库的构建 | 第38-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-41页 |
| 3.4.1 不同入侵年限互花米草对盐城湿地土壤理化性质的影响 | 第40页 |
| 3.4.2 不同入侵年限互花米草对盐城湿地甲烷氧化潜势的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.3 不同入侵年限互花米草对盐城湿地甲烷氧化菌的影响 | 第41页 |
| 3.5 结论 | 第41-42页 |
| 第4章 互花米草入侵对沿海湿地剖面土壤好氧甲烷氧化菌的影响 | 第42-54页 |
| 4.1 前言 | 第42-43页 |
| 4.2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 4.2.1 研究区域概况 | 第43页 |
| 4.2.2 土壤样品采集和理化性质分析 | 第43页 |
| 4.2.3 甲烷氧化潜势测定 | 第43页 |
| 4.2.4 DNA提取 | 第43页 |
| 4.2.5 T-RFLP分析 | 第43-44页 |
| 4.2.6 实时荧光定量PCR | 第44页 |
| 4.2.7 数据分析 | 第44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-51页 |
| 4.3.1 土壤理化性质 | 第44-45页 |
| 4.3.2 甲烷氧化潜势 | 第45-48页 |
| 4.3.3 pmoA基因丰度 | 第48-49页 |
| 4.3.4 甲烷氧化菌群落结构 | 第49-51页 |
| 4.4 讨论 | 第51-53页 |
| 4.4.1 互花米草入侵对盐城湿地剖面土壤理化性质的影响 | 第51页 |
| 4.4.2 互花米草入侵对盐城湿地剖面土壤甲烷氧化潜势的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.3 互花米草入侵对盐城湿地剖面土壤甲烷氧化菌的影响 | 第52-53页 |
| 4.5 结论 | 第53-54页 |
| 第5章 互花米草入侵对沿海湿地“活跃”甲烷氧化菌类群的影响 | 第54-70页 |
| 5.1 前言 | 第54页 |
| 5.2 材料与方法 | 第54-57页 |
| 5.2.1 研究区域概况 | 第54页 |
| 5.2.2 ~(13)C-CH_4培养实验和甲烷氧化潜势测定 | 第54-55页 |
| 5.2.3 DNA提取和氯化铯密度梯度离心 | 第55-56页 |
| 5.2.4 16S rRNA基因T-RFLP分析 | 第56页 |
| 5.2.5 16S rRNA基因克隆、测序和构建系统发育树 | 第56页 |
| 5.2.6 pmoA基因的qPCR分析 | 第56页 |
| 5.2.7 Miseq高通量测序 | 第56-57页 |
| 5.2.8 数据分析 | 第57页 |
| 5.3 结果与分析 | 第57-67页 |
| 5.3.1 土壤性质 | 第57-59页 |
| 5.3.2 培养过程中的甲烷氧化速率 | 第59-60页 |
| 5.3.3 ~(12)C-CH_4和~(13)C-CH_4微域培养后甲烷氧化菌丰度 | 第60页 |
| 5.3.4 pmoA-qPCR检测不同密度梯度中甲烷氧化菌丰度 | 第60-61页 |
| 5.3.5 T-RFLP检测不同密度梯度中细菌的相对丰度 | 第61页 |
| 5.3.6 重组DNA中16S rRNA基因细菌克隆文库的构建 | 第61-64页 |
| 5.3.7 土壤中~(13)C-CH_4标记的Miseq测序 | 第64-67页 |
| 5.4 讨论 | 第67-69页 |
| 5.5 结论 | 第69-70页 |
| 第6章 总结与展望 | 第70-72页 |
| 6.1 主要结论 | 第70-71页 |
| 6.2 研究特色与创新点 | 第71页 |
| 6.3 研究不足和展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-88页 |
| 附录 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89页 |
