摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
引言 | 第9-11页 |
1 文献综述 | 第11-24页 |
1.1 荧光金属纳米簇(MNCs)概述 | 第11-12页 |
1.2 贵金属纳米簇(Au/AgNCs) | 第12-16页 |
1.3 荧光非贵金属铜纳米簇(CuNCs) | 第16-20页 |
1.3.1 以不同配体作为模板合成CuNCs | 第16-19页 |
1.3.2 还原方式对体系的影响 | 第19-20页 |
1.4 荧光MNCs的应用 | 第20-23页 |
1.4.1 荧光MNCs作为金属离子和小分子传感器 | 第20-21页 |
1.4.2 荧光MNCs应用于生物标记和生物成像 | 第21-23页 |
1.4.3 荧光MNCs作为蛋白质和DNA传感器 | 第23页 |
1.5 本论文选题依据及研究内容 | 第23-24页 |
2 实验部分 | 第24-27页 |
2.1 实验试剂 | 第24-25页 |
2.2 实验仪器 | 第25-26页 |
2.3 Cu NCs的表征 | 第26-27页 |
2.3.1 CuNCs的TEM表征 | 第26页 |
2.3.2 CuNCs的XPS表征 | 第26-27页 |
3 基于NH_2OH·HCl还原荧光Cu NCs@BSA的合成及其对Hg~(2+)特异性检测 | 第27-52页 |
3.1 CuNCs@BSA的制备 | 第28页 |
3.2 CuNCs@BSA合成条件的优化 | 第28-38页 |
3.2.1 还原剂NH_2OH·HCl的量对CuNCs@BSA荧光强度的影响 | 第28-29页 |
3.2.2 BSA/Cu(NO_3)2摩尔比和pH对CuNCs@BSA荧光强度的影响 | 第29-31页 |
3.2.3 反应温度、时间和不同铜源对CuNCs@BSA荧光强度的影响 | 第31-33页 |
3.2.4 还原条件的优化 | 第33-38页 |
3.2.5 对照实验 | 第38页 |
3.3 合成的CuNCs@BSA结果表征 | 第38-43页 |
3.3.1 UV-vis吸收光谱 | 第38-39页 |
3.3.2 CuNCs@BSA的荧光激发和发射光谱 | 第39-40页 |
3.3.3 CuNCs@BSA的TEM表征 | 第40-41页 |
3.3.4 CuNCs@BSA的XPS表征 | 第41-42页 |
3.3.5 CuNCs@BSA的稳定性 | 第42-43页 |
3.4 应用合成的Cu NCs@BSA检测Hg~(2+) | 第43-51页 |
3.4.1 Hg~(2+)的线性检测范围和检测限 | 第46-49页 |
3.4.2 Hg~(2+)的特异性检测 | 第49-51页 |
3.5 本章小结 | 第51-52页 |
4 基于NH_2OH·HCl还原荧光CuNCs@Lys的合成及其对Co~(2+)特异性检测 | 第52-67页 |
4.1 CuNCs@Lys的制备 | 第53页 |
4.2 CuNCs@Lys合成条件的优化 | 第53-58页 |
4.2.1 还原剂NH_2OH·HCl的量对CuNCs@Lys荧光强度的影响 | 第53-54页 |
4.2.2 Lys/Cu(NO_3)_2摩尔比对CuNCs@Lys荧光强度的影响 | 第54页 |
4.2.3 pH值对CuNCs@Lys荧光强度的影响 | 第54-56页 |
4.2.4 反应温度、时间和不同铜源对CuNCs@Lys荧光强度的影响 | 第56-57页 |
4.2.5 对照实验 | 第57-58页 |
4.3 合成的Cu NCs@Lys结果表征 | 第58-62页 |
4.3.1 UV-vis吸收光谱 | 第58页 |
4.3.2 CuNCs@Lys的荧光激发和发射光谱 | 第58-59页 |
4.3.3 CuNCs@Lys的TEM表征 | 第59-60页 |
4.3.4 CuNCs@Lys的XPS表征 | 第60-61页 |
4.3.5 CuNCs@Lys的稳定性 | 第61-62页 |
4.4 应用合成的CuNCs@Lys检测Co~(2+) | 第62-65页 |
4.4.1 Co~(2+)的线性检测范围和检测限 | 第62-64页 |
4.4.2 Co~(2+)的特异性检测 | 第64-65页 |
4.5 本章小结 | 第65-67页 |
结论 | 第67-69页 |
本论文创新点及展望 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-77页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-79页 |