| 英文缩略词表 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1.前言 | 第15-17页 |
| 2. 材料与方法 | 第17-50页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-25页 |
| 2.1.1 组织标本和细胞株 | 第17页 |
| 2.1.2 主要设备和产地 | 第17-19页 |
| 2.1.3 主要药品、试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第20-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-50页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第25页 |
| 2.2.2 组织标本免疫组化 | 第25-26页 |
| 2.2.3 细胞免疫荧光法检测CRABP2蛋白的表达 | 第26-27页 |
| 2.2.4 Western Blot检测CRABP2蛋白的表达 | 第27-28页 |
| 2.2.5 MTT实验 | 第28-29页 |
| 2.2.6 shRNA-CRABP2慢病毒载体和稳定干扰细胞株构建 | 第29-35页 |
| 2.2.7 HE染色观察细胞形态学变化 | 第35-36页 |
| 2.2.8 流式细胞术检测乳腺癌细胞分化标志物ICAM-1表达 | 第36-37页 |
| 2.2.9 油红O染色观察细胞脂质小滴表达 | 第37页 |
| 2.2.10 细胞周期分析 | 第37-38页 |
| 2.2.11 MTT法检测细胞增殖状况 | 第38页 |
| 2.2.12 免疫细胞化学法（ Immunocyto chemistry, ICC ）检测增殖细胞核抗原（Proliferating cell nuclear antigen, PCNA）表达 | 第38-39页 |
| 2.2.13 Transwell法测定细胞迁移 | 第39-40页 |
| 2.2.14 Transwell 法测定细胞侵袭 | 第40-41页 |
| 2.2.15 CO-IP法检测HuR和CRABP2的相互作用 | 第41-45页 |
| 2.2.16 CRABP2对HuR- MEK-1/ERK- STAT3- ICAM-1 信号通路的影响研究 | 第45-47页 |
| 2.2.17 检测抑制STAT3表达对ICAM-1 蛋白的影响 | 第47-50页 |
| 2.2.18 统计学处理 | 第50页 |
| 3 结果 | 第50-80页 |
| 3.1 CRABP2蛋白在乳腺癌患者病理组织中的表达 | 第50-51页 |
| 3.2 CRABP2蛋白在四种不同乳腺癌细胞中的表达 | 第51-52页 |
| 3.3 ATPR对四种不同乳腺癌细胞增殖的影响 | 第52-54页 |
| 3.4 CRABP2基因干扰MCF-7 稳定细胞株构建结果 | 第54-57页 |
| 3.5 CRABP2表达差异对ATPR作用后MCF-7 细胞形态学的影响 | 第57页 |
| 3.6 沉默CRABP2表达对ATPR作用后 MCF-7细胞分化标志物ICAM-1蛋白的影响 | 第57-59页 |
| 3.7 沉默CRABP2表达对 ATPR 作用后 MCF-7 细胞脂质小滴含量的影响 | 第59-60页 |
| 3.8 沉默CRABP2表达对ATPR作用后 MCF-7细胞周期的影响 | 第60-62页 |
| 3.9 沉默CRABP2表达对ATPR作用后 MCF-7细胞增殖能力的影响 | 第62-64页 |
| 3.10 沉默CRABP2表达对ATPR作用后 MCF-7细胞PCNA表达的影响 | 第64-66页 |
| 3.11 CRABP2表达差异对ATPR作用后MCF-7 细胞迁移的影响 | 第66-67页 |
| 3.12 CRABP2表达差异对ATPR作用后MCF-7 细胞侵袭的影响 | 第67-69页 |
| 3.13 CRABP2和Hu R免疫共沉淀 | 第69-71页 |
| 3.14 ATPR对CRABP2/HuR-MEK-1/ERK-STAT3-ICAM-1 信号通路的影响研究 | 第71-77页 |
| 3.15 抑制STAT3表达对ICAM-1 蛋白的影响 | 第77-80页 |
| 4 讨论 | 第80-85页 |
| 5 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-93页 |
| 附录 个人简历 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 综述 | 第95-111页 |
| 参考文献 | 第105-111页 |
