| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-30页 |
| 文献综述 一: 干细胞治疗急性呼吸窘迫综合症的研究进展 | 第15-23页 |
| 文献综述 二: 溶血磷脂酸对干细胞的作用研究 | 第23-30页 |
| 第二章 溶血磷脂酸对大鼠内皮祖细胞的存活与分化的影响 | 第30-75页 |
| 前言 | 第30-32页 |
| 第一节 内皮祖细胞的分离、培养、鉴定及溶血磷脂酸对其分化的影响 | 第32-45页 |
| 1 引言 | 第32-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-36页 |
| 2.1 主要试剂及实验材料 | 第33页 |
| 2.2 主要实验设备 | 第33页 |
| 2.3 主要试剂配制方法 | 第33-34页 |
| 2.4 细胞来源 | 第34页 |
| 2.5 实验方法 | 第34-36页 |
| 2.6 统计方法 | 第36页 |
| 3 结果 | 第36-43页 |
| 3.1 内皮祖细胞的分离、培养 | 第36-37页 |
| 3.2 内皮祖细胞的鉴定 | 第37-41页 |
| 3.3 溶血磷脂酸对内皮祖细胞克隆形成的影响 | 第41-42页 |
| 3.4 溶血磷脂酸对内皮祖细胞特异性标记的影响 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-44页 |
| 5 小结 | 第44-45页 |
| 第二节 溶血磷脂酸促进内皮祖细胞增殖及其信号通路 | 第45-63页 |
| 1 引言 | 第45页 |
| 2 材料与方法 | 第45-56页 |
| 2.1 主要试剂及实验材料 | 第45-46页 |
| 2.2 主要实验设备 | 第46-47页 |
| 2.3 主要试剂配制方法 | 第47页 |
| 2.4 细胞来源 | 第47页 |
| 2.5 实验方法 | 第47-56页 |
| 2.6 统计方法 | 第56页 |
| 3 结果 | 第56-61页 |
| 3.1 LPA剂量依赖地促进大鼠内皮祖细胞增殖 | 第56页 |
| 3.2 LPA通过LPAR1促进内皮祖细胞增殖 | 第56-58页 |
| 3.3 LPA通过LPAR1偶联Gi蛋白介导内皮祖细胞增殖 | 第58-59页 |
| 3.4 LPA通过LPAR1偶联G_(i/o)蛋白激活ERK1/2,进而促进内皮祖细胞的增殖 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-62页 |
| 5 小结 | 第62-63页 |
| 第三节 溶血磷脂酸促进内皮祖细胞迁移及其信号通路 | 第63-75页 |
| 1 引言 | 第63页 |
| 2 材料与方法 | 第63-68页 |
| 2.1 主要试剂及实验材料 | 第63-64页 |
| 2.2 主要实验设备 | 第64页 |
| 2.3 主要试剂配制方法 | 第64-65页 |
| 2.4 细胞来源 | 第65页 |
| 2.5 实验方法 | 第65-68页 |
| 2.6 统计方法 | 第68页 |
| 3 结果 | 第68-73页 |
| 3.1 LPA剂量依赖地促进内皮祖细胞迁移 | 第68-69页 |
| 3.2 Ki6425抑制LPA诱导的内皮祖细胞迁移 | 第69-70页 |
| 3.3 LPA/LPAR1通过偶联G_(i/o)和G_(q/l1)蛋白介导内皮祖细胞迁移 | 第70-71页 |
| 3.4 ERK1/2、JNK和P38不参与LPA诱导的内皮祖细胞迁移过程 | 第71-72页 |
| 3.5 MMP-2和MMP-9不参与LPA诱导的内皮祖细胞迁移过程 | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-74页 |
| 5 小结 | 第74-75页 |
| 第三章 溶血磷脂酸对内皮祖细胞分泌细胞因子的影响 | 第75-90页 |
| 1 引言 | 第75页 |
| 2 材料与方法 | 第75-80页 |
| 2.1 主要试剂及实验材料 | 第75-76页 |
| 2.2 主要实验设备 | 第76页 |
| 2.3 细胞来源 | 第76页 |
| 2.4 实验方法 | 第76-79页 |
| 2.5 统计方法 | 第79-80页 |
| 3 结果 | 第80-87页 |
| 3.1 LPA对EPC分泌VEGF的影响 | 第80-81页 |
| 3.2 LPA对EPCs促炎因子分泌的影响 | 第81-85页 |
| 3.3 LPA对EPCs抗炎因子分泌的影响 | 第85-86页 |
| 3.4 LPA对EPCs内NF-κ B/p65磷酸化的影响 | 第86-87页 |
| 4 讨论 | 第87-88页 |
| 5 小结 | 第88-90页 |
| 第四章 内皮祖细胞治疗急性呼吸窘迫综合症中溶血磷脂酸的作用 | 第90-104页 |
| 1 引言 | 第90-91页 |
| 2 材料与方法 | 第91-95页 |
| 2.1 主要试剂及实验材料 | 第91页 |
| 2.2 主要实验设备 | 第91-92页 |
| 2.3 主要试剂配制方法 | 第92页 |
| 2.4 细胞和动物来源 | 第92页 |
| 2.5 实验方法 | 第92-95页 |
| 2.6 统计方法 | 第95页 |
| 3 结果 | 第95-102页 |
| 3.1 LPA预处理可提高ARDS大鼠体内移植的EPC数量 | 第95-98页 |
| 3.2 EPC移植显著降低脂多糖诱导的肺损伤,LPA预处理EPC可提高移植后的治疗效果 | 第98-99页 |
| 3.3 EPC移植显著降低脂多糖诱导的肺水肿,但LPA预处理和未处理的EPC移植组间没有差异 | 第99-100页 |
| 3.4 EPC移植可显著降低血浆中促炎因子和抗炎因子的含量,LPA预处理EPC提高血浆中IL-10和IL-7含量 | 第100-102页 |
| 4 讨论 | 第102页 |
| 5 小结 | 第102-104页 |
| 结论 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-116页 |
| 附录 | 第116-121页 |
| 致谢 | 第121-122页 |
| 在校期间完成的学术论文与参与的科研项目 | 第122-123页 |
