| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 手性环氧化物及邻二醇简介 | 第10-11页 |
| 1.2 手性环氧化物及邻二醇的合成 | 第11-13页 |
| 1.2.1 化学合成法 | 第11-12页 |
| 1.2.2 生物合成法 | 第12-13页 |
| 1.3 环氧化物水解酶概述 | 第13-15页 |
| 1.3.1 环氧化物水解酶的生理学功能 | 第13-14页 |
| 1.3.2 环氧化物水解酶的催化机理 | 第14-15页 |
| 1.4 环氧化物水解酶转化工艺 | 第15-19页 |
| 1.4.1 环氧化物水解酶拆分应用途径 | 第15-16页 |
| 1.4.2 环氧环氧化物承解酶拆分工艺 | 第16-19页 |
| 1.5 本课题的研究背景和内容 | 第19-20页 |
| 1.5.1 研究背景和目的 | 第19页 |
| 1.5.2 主要的研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 微生物环氧化物水解酶产生菌的筛选 | 第20-33页 |
| 2.0 前言 | 第20-21页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-27页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第21页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第21页 |
| 2.1.3 主要材料与试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.4 培养基 | 第22页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第22-23页 |
| 2.1.6 底物合成 | 第23-24页 |
| 2.1.7 菌种筛选 | 第24-27页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 2.2.1 筛选结果 | 第27页 |
| 2.2.2 群体形态 | 第27-28页 |
| 2.2.3 菌种的鉴定 | 第28-32页 |
| 2.3.小结 | 第32-33页 |
| 第三章 发酵条件的优化 | 第33-38页 |
| 3.1 前言 | 第33-34页 |
| 3.2 材料与方法 | 第34-35页 |
| 3.2.1 菌种 | 第34页 |
| 3.2.2 培养基 | 第34页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第34页 |
| 3.2.4 细胞生物量的测定 | 第34页 |
| 3.2.5 酶活力测定方法 | 第34-35页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第35-37页 |
| 3.3.1 不同种类碳源对产酶的影响 | 第35页 |
| 3.3.2 不同种类氮源对产酶的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.3 金属离子对产酶的影响 | 第37页 |
| 3.4 小结 | 第37-38页 |
| 第四章 微生物环氧化物水解酶底物转化条件研究 | 第38-45页 |
| 4.1 前言 | 第38页 |
| 4.2 材料与方法 | 第38-40页 |
| 4.2.1 菌株 | 第38页 |
| 4.2.2 培养基 | 第38-39页 |
| 4.2.3 仪器 | 第39页 |
| 4.2.4 整细胞转化实验 | 第39页 |
| 4.2.5 分析方法 | 第39-40页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第40-44页 |
| 4.3.1 转化时间对e.e._s值的影响 | 第40页 |
| 4.3.2 转化温度对e.e._s值的影响 | 第40-41页 |
| 4.3.3 不同缓冲液及pH对e.e._s值的影响 | 第41-44页 |
| 4.4 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 环氧化物水解酶催化下的环氧化物胺解反应 | 第45-50页 |
| 5.1 前言 | 第45页 |
| 5.2 材料与方法 | 第45-46页 |
| 5.2.1 菌种 | 第45页 |
| 5.2.2 培养基 | 第45页 |
| 5.2.3 实验仪器 | 第45-46页 |
| 5.2.4 转化条件 | 第46页 |
| 5.2.5 分析方法 | 第46页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第46-49页 |
| 5.3.1 环氧化物水解酶催化的胺解和醇解反应 | 第46-47页 |
| 5.3.2 环氧化物水解酶催化胺解反应条件的研究 | 第47-49页 |
| 5.4 小结 | 第49-50页 |
| 第六章 总结与展望 | 第50-52页 |
| 6.1 总结 | 第50-51页 |
| 6.2 展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第57页 |