| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-15页 |
| 缩略词表 | 第15-16页 |
| 第一章 NK 细胞和HERCEPTIN 的研究进展 | 第16-21页 |
| 前言 | 第16页 |
| ·自然杀伤细胞研究进展 | 第16-18页 |
| ·NK 细胞的表面受体 | 第17-18页 |
| ·NKG2D 及其配体 | 第18页 |
| ·赫赛汀（HERCEPTIN） | 第18-19页 |
| ·本课题的创意和研究内容 | 第19-21页 |
| ·本课题的创意 | 第19-20页 |
| ·本课题的研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 携带HERCEPTIN-NKG2DL 融合基因的重组腺病毒的构建 | 第21-64页 |
| ·前言 | 第21页 |
| ·实验器材 | 第21-25页 |
| ·实验材料 | 第21-22页 |
| ·主要的实验仪器与设备 | 第22-23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要试剂的配制 | 第23页 |
| ·所需引物 | 第23-24页 |
| ·基因合成 | 第24-25页 |
| ·方法 | 第25-47页 |
| ·载体构建 | 第25-41页 |
| ·质粒的大量制备 | 第41-42页 |
| ·病毒重组、扩增和纯化 | 第42-47页 |
| ·病毒滴度的测定（5096组织培养感染剂量法） | 第47页 |
| ·结果 | 第47-62页 |
| ·用于质粒pDC355-AT5-NKG2DL 构建的各目的片段的电泳结果 | 第47-50页 |
| ·质粒pDC355-AT5-NKG2DL 的鉴定 | 第50-53页 |
| ·用于质粒pDC358-AT5-NKG2DL 构建的各目的片段的电泳结果 | 第53-54页 |
| ·质粒pDC358-AT5-NKG2DL 的鉴定 | 第54-55页 |
| ·用于质粒pDC339-AT5-NKG2DL 构建的各目的片段的电泳结果 | 第55-56页 |
| ·质粒pDC339-AT5-NKG2DL 的鉴定 | 第56-57页 |
| ·重组腺病毒的鉴定 | 第57-62页 |
| ·病毒滴度测定 | 第62页 |
| ·讨论 | 第62页 |
| ·小结 | 第62-64页 |
| 第三章 重组腺病毒抗肿瘤效果评估 | 第64-75页 |
| ·实验器材 | 第64-66页 |
| ·实验所需材料 | 第64页 |
| ·实验所需仪器 | 第64-65页 |
| ·实验所需主要试剂 | 第65页 |
| ·主要试剂的配制 | 第65-66页 |
| ·实验方法 | 第66-70页 |
| ·细胞培养 | 第66页 |
| ·ELISA 方法检测蛋白的表达量. | 第66-67页 |
| ·Western Blot 方法检测蛋白的表达 | 第67-68页 |
| ·间接免疫荧光分析（IFA）检测蛋白的结合特性. | 第68-69页 |
| ·LDH 释放实验研究蛋白的功能. | 第69-70页 |
| ·实验结果 | 第70-73页 |
| ·病毒 Ad5-AT5 和Ad5-AT5-MICA(E)的目的蛋白表达量的测定. | 第70-71页 |
| ·间接免疫荧光分析（Indirect immunofluorescence Assay,IFA） | 第71-73页 |
| ·细胞毒活性实验（Cytotoxicity assay） | 第73页 |
| ·讨论 | 第73-75页 |
| 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 附录 | 第82-86页 |
| 附录1 整体实验流程图 | 第82-83页 |
| 附录2 AT5H’-MICA(E) 测序结果 | 第83-86页 |
