| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 1.1 结直肠癌的研究背景及治疗现状 | 第11-12页 |
| 1.2 肿瘤细胞侵袭转移与细胞趋化运动 | 第12页 |
| 1.3 ELMO3在结直肠癌侵袭转移中作用的设想 | 第12-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-36页 |
| 2.1 实验对象、试剂与设备 | 第14-18页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第14页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第14-16页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第16页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第16-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-35页 |
| 2.2.1 组织学研究 | 第18-27页 |
| 2.2.1.1 收集组织和整理临床病理资料 | 第18页 |
| 2.2.1.2 RT-qPCR检测组织中ELMO3 mRNA的表达水平 | 第18-22页 |
| 2.2.1.3 Western-blot检测组织中的ELMO3蛋白表达水平 | 第22-25页 |
| 2.2.1.4 免疫组织化学检测及结果判断 | 第25-27页 |
| 2.2.2 细胞学研究 | 第27-35页 |
| 2.2.2.1 细胞培养 | 第27-29页 |
| 2.2.2.2 RT-PCR和Western-blot检测ELMO3在不同结肠癌细胞株中的表达情况 | 第29-30页 |
| 2.2.2.3 小RNA干扰技术 | 第30-32页 |
| 2.2.2.4 划痕试验 | 第32页 |
| 2.2.2.5 迁移实验 | 第32-33页 |
| 2.2.2.6 Transwell侵袭实验 | 第33页 |
| 2.2.2.7 MTS细胞增殖实验 | 第33-34页 |
| 2.2.2.8 PI法细胞周期检测 | 第34-35页 |
| 2.2.2.9 聚焦荧光显微镜染色 | 第35页 |
| 2.3 统计学处理 | 第35-36页 |
| 第3章 结果 | 第36-45页 |
| 3.1 组织学实验结果 | 第36-38页 |
| 3.1.1 ELMO3在结直肠癌组织及正常组织中的异常表达 | 第36-37页 |
| 3.1.2 ELMO3的表达水平与结直肠癌患者临床病理参数的关系 | 第37-38页 |
| 3.2 细胞学实验结果 | 第38-45页 |
| 3.2.1 ELMO3在不同结肠癌细胞株中的表达情况 | 第38-39页 |
| 3.2.2 siELMO3最佳序列的筛选和沉默效率的验证 | 第39-40页 |
| 3.2.3 ELMO3降表达能抑制HCT116细胞迁移和侵袭能力 | 第40-42页 |
| 3.2.4 ELMO3降表达能抑制HCT116细胞增殖能力 | 第42页 |
| 3.2.5 ELMO3降表达能诱导HCT116细胞G1期阻滞 | 第42-44页 |
| 3.2.6 ELMO3降表达能抑制HCT116细胞F-actin聚合 | 第44-45页 |
| 第4章 讨论 | 第45-48页 |
| 第5章 结论 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第54-55页 |
| 综述 | 第55-62页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
