| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 研究现状、成果 | 第13-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、口服胰岛素纳米粒的制备和表征 | 第18-23页 |
| 1.1 对象和材料 | 第18-19页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第18页 |
| 1.1.2 实验材料 | 第18页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第18页 |
| 1.1.4 主要试剂配制 | 第18-19页 |
| 1.2 方法 | 第19-20页 |
| 1.2.1 载胰岛素或胰岛素-PEG-LMWP复合物纳米粒的制备 | 第19页 |
| 1.2.2 载胰岛素或胰岛素-PEG-LMWP复合物纳米粒粒径、ζ-电位和包封率测定 | 第19-20页 |
| 1.2.3 纳米粒在模拟胃肠液中的释放考察 | 第20页 |
| 1.3 结果 | 第20-21页 |
| 1.3.1 纳米粒的粒径、ζ-电位和包封率 | 第20页 |
| 1.3.2 纳米粒在模拟胃肠液中的释放考察 | 第20-21页 |
| 1.4 讨论 | 第21页 |
| 1.4.1 纳米粒的粒径、ζ-电位和包封率 | 第21页 |
| 1.4.2 纳米粒在模拟胃肠液中的释放考察 | 第21页 |
| 1.5 小结 | 第21-23页 |
| 二、口服胰岛素纳米粒动物水平降血糖效果评价 | 第23-27页 |
| 2.1 对象和材料 | 第23页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第23页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第23页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第23页 |
| 2.2 方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 链脲佐菌素诱导大鼠糖尿病模型的建立 | 第23页 |
| 2.2.2 实验动物分组 | 第23-24页 |
| 2.2.3 载复合物纳米粒的口服药效学研究 | 第24页 |
| 2.3 结果 | 第24-26页 |
| 2.3.1 链脲佐菌素诱导糖尿病大鼠模型的建立 | 第24页 |
| 2.3.2 载复合物纳米粒的口服药效学研究 | 第24-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26页 |
| 2.5 小结 | 第26-27页 |
| 三、BSA载舒尼替尼和姜黄素纳米制剂的制备和表征 | 第27-36页 |
| 3.1 对象和材料 | 第27-28页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第27页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第27页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第27页 |
| 3.1.4 主要试剂配制 | 第27-28页 |
| 3.2 方法 | 第28-30页 |
| 3.2.1 舒尼替尼和姜黄素HPLC标准曲线的绘制 | 第28页 |
| 3.2.2 BSA载姜黄素和舒尼替尼纳米制剂的优化 | 第28-29页 |
| 3.2.3 透射电镜观察BSA纳米粒形状和大小 | 第29页 |
| 3.2.4 纳米制剂的稳定性考察 | 第29页 |
| 3.2.5 纳米制剂药物体外释放实验考察 | 第29-30页 |
| 3.3 结果 | 第30-33页 |
| 3.3.1 舒尼替尼和姜黄素HPLC标准曲线的绘制 | 第30页 |
| 3.3.2 BSA载姜黄素和舒尼替尼纳米制剂的优化 | 第30-31页 |
| 3.3.3 透射电镜观察BSA纳米粒形状和大小 | 第31页 |
| 3.3.4 纳米制剂的稳定性考察 | 第31页 |
| 3.3.5 纳米制剂药物体外释放实验考察 | 第31-33页 |
| 3.4 讨论 | 第33-35页 |
| 3.5 小结 | 第35-36页 |
| 四、BSA载舒尼替尼和姜黄素纳米制剂细胞水平评价 | 第36-47页 |
| 4.1 对象和材料 | 第36-37页 |
| 4.1.1 实验对象 | 第36页 |
| 4.1.2 实验材料 | 第36页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第36页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第36-37页 |
| 4.2 方法 | 第37-41页 |
| 4.2.1 乳腺癌细胞MCF-7 细胞培养 | 第37-38页 |
| 4.2.2 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第38-39页 |
| 4.2.3 激光共聚焦显微镜观察细胞对药物的摄取 | 第39-40页 |
| 4.2.4 流式细胞仪测定细胞对药物的摄取 | 第40页 |
| 4.2.5 流式细胞仪检测药物对细胞凋亡的影响 | 第40-41页 |
| 4.3 结果 | 第41-44页 |
| 4.3.1 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第41-42页 |
| 4.3.2 激光共聚焦显微镜观察细胞对药物的摄取 | 第42页 |
| 4.3.3 流式细胞仪测定细胞对药物的摄取 | 第42页 |
| 4.3.4 流式细胞仪检测药物对细胞凋亡的影响 | 第42-44页 |
| 4.4 讨论 | 第44-46页 |
| 4.4.1 MTT法检测细胞增殖抑制率 | 第44-45页 |
| 4.4.2 激光共聚焦显微镜观察细胞对药物的摄取 | 第45页 |
| 4.4.3 流式细胞仪测定细胞对药物的摄取 | 第45页 |
| 4.4.4 流式细胞仪检测药物对细胞凋亡的影响 | 第45-46页 |
| 4.5 小结 | 第46-47页 |
| 五、BSA载舒尼替尼和姜黄素联合给药抗肿瘤活性动物评价 | 第47-51页 |
| 5.1 对象和材料 | 第47页 |
| 5.1.1 实验对象 | 第47页 |
| 5.1.2 实验材料 | 第47页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第47页 |
| 5.1.4 主要试剂配制 | 第47页 |
| 5.2 方法 | 第47-48页 |
| 5.2.1 乳腺癌动物模型的建立 | 第47页 |
| 5.2.2 实验动物分组 | 第47-48页 |
| 5.2.3 实验步骤 | 第48页 |
| 5.2.4 数据统计 | 第48页 |
| 5.3 结果 | 第48页 |
| 5.3.1 肿瘤体积的变化 | 第48页 |
| 5.3.2 动物体重的变化 | 第48页 |
| 5.4 讨论 | 第48-50页 |
| 5.5 小结 | 第50-51页 |
| 六、结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
| 综述 基于生物蛋白的纳米药物的研究 | 第60-80页 |
| 1. 生物蛋白作为治疗药物在药物传递系统中的应用 | 第60-63页 |
| 2. 生物蛋白作为纳米粒载体材料在药物传递系统中的应用 | 第63-70页 |
| 3. 生物蛋白作为自组装纳米粒系统在药物传递系统中的应用 | 第70页 |
| 总结 | 第70-71页 |
| 综述参考文献 | 第71-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 个人简历 | 第82页 |
