摘要 | 第9-11页 |
ABSTRACT | 第11-12页 |
引言 | 第17-18页 |
第一章 植物应答干旱胁迫的研究进展 | 第18-32页 |
1.1 形态学变化 | 第18页 |
1.2 光合响应与气孔调剂 | 第18-19页 |
1.3 渗透调节 | 第19-22页 |
1.3.1 脯氨酸(Proline) | 第20页 |
1.3.2 甜菜碱(Betaine) | 第20-21页 |
1.3.3 可溶性糖(Soluble sugar) | 第21页 |
1.3.4 水通道蛋白(Aquaporin) | 第21页 |
1.3.5 水溶性蛋白(water-soluble protein) | 第21-22页 |
1.4 活性氧清除系统 | 第22-23页 |
1.4.1 保护酶系统 | 第22页 |
1.4.2 抗坏血酸 (AsA)-谷胱甘肽 (GSH)系统 | 第22-23页 |
1.5 植物抗旱相关基因的研究进展 | 第23-28页 |
1.5.1 水分运输相关基因 | 第23-24页 |
1.5.2 LEA蛋白基因 | 第24页 |
1.5.3 渗透调节相关基因 | 第24-25页 |
1.5.4 气孔调节相关基因 | 第25页 |
1.5.5 转运体蛋白基因 | 第25页 |
1.5.6 细胞抗氧化相关基因 | 第25-26页 |
1.5.7 信号传导基因 | 第26-27页 |
1.5.8 转录因子基因 | 第27-28页 |
1.6 转录组学在植物应答干旱胁迫上的应用 | 第28-29页 |
1.6.1 转录组学技术 | 第28页 |
1.6.2 植物抗旱转录组学研究进展 | 第28-29页 |
1.7 本研究主要背景、内容、目的和意义 | 第29-32页 |
1.7.1 舟山新木姜子研究进展 | 第29-30页 |
1.7.2 研究内容和路线 | 第30页 |
1.7.3 研究目的和意义 | 第30-32页 |
第二章 舟山新木姜子对干旱胁迫的生理响应 | 第32-42页 |
2.1 材料与试剂 | 第32-33页 |
2.1.1 试验材料 | 第32页 |
2.1.2 仪器与试剂 | 第32-33页 |
2.2 试验方法 | 第33-36页 |
2.2.1 材料处理 | 第33页 |
2.2.2 光合作用参数的测定 | 第33-34页 |
2.2.3 保护酶活性的测定 | 第34-35页 |
2.2.4 渗透调节物质、丙二醛的测定 | 第35-36页 |
2.2.5 细胞膜透性的测定 | 第36页 |
2.3 结果与分析 | 第36-40页 |
2.3.0 干旱胁迫下舟山新木姜子幼苗叶片的形态影响 | 第36页 |
2.3.1 干旱胁迫下舟山新木姜子幼苗叶片的光合响应 | 第36-38页 |
2.3.2 干旱胁迫对舟山新木姜子幼苗叶片抗氧化酶活性的影响 | 第38-39页 |
2.3.3 干旱对新木姜子幼苗叶片渗透调节物质的影响 | 第39-40页 |
2.3.4 干旱对新木姜子幼苗叶片丙二醛含量及细胞膜透性的影响 | 第40页 |
2.4 讨论 | 第40-42页 |
第三章 转录组分析 | 第42-61页 |
3.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
3.1.1 试验材料 | 第42页 |
3.1.2 仪器与试剂 | 第42-43页 |
3.2 试验方法 | 第43-46页 |
3.2.1 生长与水分胁迫处理 | 第43-44页 |
3.2.2 TRIzol法提取总RNA | 第44页 |
3.2.3 反转录 | 第44-45页 |
3.2.4 qRT-PCR验证 | 第45-46页 |
3.2.5 cDNA测序及序列片段的处理与组装 | 第46页 |
3.2.6 功能注释 | 第46页 |
3.3 结果与分析 | 第46-59页 |
3.3.1 总RNA提取结果 | 第46-47页 |
3.3.2 测序和组装 | 第47页 |
3.3.3 功能注释 | 第47-50页 |
3.3.4 差异基因(DEGs)分析 | 第50-52页 |
3.3.5 差异基因富集分析 | 第52-55页 |
3.3.6 与抗旱相关DEGs的功能鉴定 | 第55-59页 |
3.4 讨论 | 第59-61页 |
3.4.1 渗透调节 | 第59-60页 |
3.4.2 植物激素 | 第60页 |
3.4.3 转录因子 | 第60-61页 |
结论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第72页 |