| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-29页 |
| ·模式识别受体 | 第10-11页 |
| ·无脊椎动物模式识别受体的分类 | 第11-19页 |
| ·肽聚糖识别蛋白 | 第11-13页 |
| ·革兰氏阴性菌结合蛋白 | 第13-14页 |
| ·含硫脂键蛋白 | 第14页 |
| ·清道夫受体 | 第14-15页 |
| ·血素 | 第15页 |
| ·Toll 样受体 | 第15-17页 |
| ·硫依赖型凝集素 | 第17页 |
| ·C-型凝集素 | 第17-19页 |
| ·甲壳动物的免疫系统 | 第19-24页 |
| ·屏障作用 | 第19页 |
| ·滤过作用 | 第19-20页 |
| ·细胞免疫 | 第20-23页 |
| ·体液免疫 | 第23-24页 |
| ·甲壳动物的模式识别受体 | 第24页 |
| ·对虾C-型凝集素 | 第24-28页 |
| ·中国明对虾C-型凝集素 | 第24-26页 |
| ·凡纳滨对虾C-型凝集素 | 第26页 |
| ·斑节对虾C-型凝集素 | 第26-27页 |
| ·日本囊对虾C-型凝集素 | 第27页 |
| ·其他对虾C-型凝集素 | 第27-28页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
| 第二章 凡纳滨对虾两种C-型凝集素基因克隆和表达分析 | 第29-55页 |
| ·材料与方法 | 第30-38页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-38页 |
| ·结果 | 第38-52页 |
| ·总RNA 提取及检测 | 第38-39页 |
| ·Lvlectin1 和Lvlectin2 基因的克隆及序列分 | 第39-43页 |
| ·Lvlectin1 基因与其他甲壳动物C-型凝集素CRD 多序列比对分析 | 第43-44页 |
| ·Lvlectin2 基因与其他甲壳动物C-型凝集素CRD 多序列比对分析 | 第44-45页 |
| ·Lvlectin1 和Lvlectin2 基因与其他甲壳动物C-型凝集素系统进化树分 | 第45-46页 |
| ·组织分布 | 第46-47页 |
| ·白斑综合症病毒（WSSV）感染半数致死时间 | 第47-48页 |
| ·免疫刺激后Lvlectin1 基因的表达变化 | 第48-50页 |
| ·免疫刺激后Lvlectin2 基因的表达变化 | 第50-52页 |
| ·讨论 | 第52-55页 |
| 第三章 Lvlectin1 基因的重组表达、分离纯化及活性分析 | 第55-70页 |
| ·材料与方法 | 第56-63页 |
| ·实验材料 | 第56-59页 |
| ·实验方法 | 第59-63页 |
| ·结果 | 第63-68页 |
| ·重组表达载体的构建 | 第63-64页 |
| ·重组蛋白的诱导表达及产物分析 | 第64页 |
| ·重组Lvlectin1 蛋白的纯化 | 第64-65页 |
| ·重组Lvlectin1 蛋白活性的鉴定 | 第65-68页 |
| ·讨论 | 第68-70页 |
| 第四章 利用RNAi 研究Lvlectin1 基因对对虾防御WSSV 感染的影响 | 第70-82页 |
| ·材料与方法 | 第71-76页 |
| ·实验材料 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72-76页 |
| ·结果 | 第76-79页 |
| ·dsRNA 的合成和纯化 | 第76-77页 |
| ·dsRNA 干扰剂量的确定 | 第77-78页 |
| ·dsRNA 干扰及WSSV 病毒感染实验 | 第78-79页 |
| ·讨论 | 第79-82页 |
| 第五章 含Lvlectin1 基因的凡纳滨对虾BAC 克隆的筛选 | 第82-92页 |
| ·材料和方法 | 第83-86页 |
| ·实验材料 | 第83页 |
| ·实验方法 | 第83-86页 |
| ·结果 | 第86-89页 |
| ·凡纳滨对虾肌肉组织DNA 的提取及检测 | 第86-87页 |
| ·PCR 方法筛选BAC 文库中的阳性克隆 | 第87-88页 |
| ·含有Lvlectin1 基因的BAC 克隆插入片段大小的确定 | 第88-89页 |
| ·讨论 | 第89-92页 |
| 结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
